Біоплівкоутворюючі властивості клінічних ізолятів pseudomonas aeruginosa, виділених від дітей хворих на муковісцидоз, та можливості впливу bacillussubtilis на них in vitro.

Автор(и)

  • О. V. Ishchenko Державний заклад «Дніпропетровська медична академія Міністерства охорони здоров’я України», Ukraine https://orcid.org/0000-0001-6350-8176
  • A. O. Yukhymenko Державний заклад «Дніпропетровська медична академія Міністерства охорони здоров’я України», Ukraine
  • І. P. Koshova Державний заклад «Дніпропетровська медична академія Міністерства охорони здоров’я України», Ukraine https://orcid.org/0000-0002-5631-8005
  • S. І. Ilchenko Державний заклад «Дніпропетровська медична академія Міністерства охорони здоров’я України», Ukraine https://orcid.org/0000-0003-2181-1833
  • D. О. Stepanskyi Державний заклад «Дніпропетровська медична академія Міністерства охорони здоров’я України», Ukraine https://orcid.org/0000-0001-6350-8176

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2019.3.40-47

Ключові слова:

муковісцидоз, P. aeruginosa, мукоїдний фенотип, біоплівка, B. subtilis, антагонізм

Анотація

Актуальність. Інфікування Pseudomonas aeruginosa визначає клінічний прогноз упацієнтів з муковісцидозом. Мукоїдніморфотипи P. Aeruginosa здатні до формування біоплівок та росту в них. З огляду на множинну резистентність біоплівок обговорюється можливість використання Bacillusspp. зметою санітарної обробки поверхонь, на яких можуть зберігатися патогени. Мета– вивчити біоплівкоутворюючі властивості клінічних ізолятів P. aeruginosa, виділених від дітей з муковісцидозом, та вплив на них Bacillus subtilis in vitro. Методи. Зразки мокротиння та/або слизу з глибокого мазку з задньої стінки глотки взяті від дітей хворих на муковісцидоз. Використано бактеріологічний, мікроскопічний, біохімічний та статистичний методи дослідження. Антагоністичні властивості P. Aeruginosa та B. Subtilis вивчали методом відстроченого антагонізму з використанням методики перпендикулярних штрихів та при спільному культивуванні в рідкому поживному середовищі з наступним висівом серійних розведень суспензій.Здатність до утворення біоплівоквизначали експрес-методом з використанням 96-луночних планшетів. Результати. При бактеріологічному дослідженні встановили, що P. aeruginosa виділяється з 34,21% (95% ДІ 32,50-35,92) зразків. При вивченні відстроченого антагонізму між P. Aeruginosa і B. subtilis, а також при їх спільному культивуванні в рідкому поживному середовищі виявили, що B. Subtilis володіють прямим помірним антагонізмом по відношенню до P. aeruginosa. Після спільної культивації культура бацил давала рясний ріст в усіх дослідах при всіх повтореннях, обмежуючи ріст P. aeruginosa. Серед виділених ізолятів P. aeruginosa встановлено здатність до біоплівкоутворення в 76,92% (95% ДІ 73,02-80,77) випадків, серед зразків B. subtilis – в 100%. При спільному культивуванні B. subtilis утворювали біоплівку в присутностіP. aeruginosa в більшості випадків. Висновки. Клінічні ізоляти P. aeruginosa, виділені від дітей з муковісцидозом помірно чутливі до дії B. subtilisinvitro. Біоплівкоутворення P. Aeruginosa in vitro може бути пригнічене дією B. subtilis.

Посилання

Gilligan PH. Infections in patients with cystic fibrosis: diagnostic microbiology update. Clin Lab Med. 2014;34(2):197-217. DOI: 10.1016/j.cll.2014.02.001.

IlchenkoSI. [Clinical and microbiological peculiarities of mucoviscidosis course in children of big industrial city].Pathologia. 2014;3(32):73–77. Ukrainian. DOI: 10.14739/2310-1237.2014.3.36980

Huang YJ, LiPuma JJ. The Microbiome in Cystic Fibrosis.Clin Chest Med. 2016;37(1):59-67.DOI: 10.1016/j.ccm.2015.10.003.

Lezhenko GO, AbaturovOYe, PashkovaOYe, Pantyushenko LI. [Pathogenetic significance of antimicrobial peptides in the implementation of antibacterial protection in children with Cystic Fibrosis]. Zdoroverebenka. 2013;3(46):44-49. Ukrainian.

Pressler T, Bohmova C, Conway S, Dumcius S, Hjelte L, Hoiby N, Kollberg H, Tümmler B, Vavrova V.ChronicPseudomonasaeruginosainfectiondefinition: EuroCareCFWorkingGroupreport.J CystFibros. 2011;(2):75-78. DOI: 10.1016/S1569-1993(11)60011-8

Lazareva AV, Tchebotar IV, Kryzhanovskaya OA., Tchebotar VI, Mayanskiy NA.[Pseudomonasaeruginosa: Pathogenicity, PathogenesisandDiseases]. ClinicalMicrobiologyandAntimicrobialChemotherapy. 2015;3(17):170-186.Russian.

Trofimenko YuYu. [Biological features of microflora colonizing endotracheal intubation tubes in intensive care units]. Thesis for the PhD degree in Medical Sciences. Vinnytsia National Medical University named after MI Pirogov. Vinnytsia, 2015 - 127 p. Ukrainian. URL: https://www.vnmu.edu.ua/downloads/other/dis_trofimenko.pdf

Hoppe JE, Harris JK, Zemanick ET. Assessing the Airway Microbiotain Cystic Fibrosis. Clinical Microbiology Newsletter. 2016;38(22):179-184.

Galkin MB, Ivanytsia VO, Galkin BM, Filipova TO. [Biofilm matrix – chemical composition, structure, functions]. Microbiology & Biotechnology. 2016;4:6-27. Ukrainian. DOI http://dx.doi.org/10.18524/2307-4663.2016.4(36).86349.

Rakhmatullina MR, Nechayeva IA. [Biofilms of microorganisms and their role for the formation of resistance to antibacterial drugs]. Vestnik dermatologii i venerologii. 2015;(2):58—62. Russian.

Al-Marzooq F, AlBayat S, Sayyar F, Ishaq H, Nasralla H, Koutaich R, AlKawas S. Can probiotic cleaning solutions replace chemical disinfectants in dental clinics? Eur J Dent. 2018;12(4/):532–539. DOI: 10.4103/ejd.ejd_124_18. PMCID: PMC6178676. PMID: 30369799.

Carling PC, Parry MF, Bruno-Murtha LA, Dick B. Improvingenvironmentalhygienein 27 intensivecareunitstodecrease multidrug-resistant bacterialtransmission. CritCareMed. 2010;38(4):1054–1059. https:// doi.org/10.1097/CCM.0b013e3181cdf705. PMID: 20081531

Rutala WA, Weber DJ. Selectionoftheidealdisinfectant. InfectControlHospEpidemiol. 2014;35(7):855–865. https://doi.org/10.1086/676877. PMID: 24915214.

La Fauci V, Costa GB, Anastasi F, Facciolà A, Grillo OC, SqueriR.

An Innovative Approach to Hospital Sanitization Using Probiotics: In Vitro and Field Trials. J MicrobBiochem Technol. 2015;7(3):160-164. DOI http://dx.doi.org/10.4172/1948-5948.1000198.

Caselli E, Brusaferro S, Coccagna M, Arnoldo L, Berloco F, Antonioli P. Reducing healthcare-associated infectionsincidenceby a probiotic-based sanitationsystem: A multicentre, prospective, interventionstudy. PLoS ONE. 2014;13(7):1-17: e0199616. https://doi.org/10.1371/ journal.pone.0199616. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6042698/pdf/pone.0199616.pdf

Maria DA, Irene S, Piffanelli M, Bisi M, Mazzacane S, Caselli E. Efficient removal of hospital pathogens from hard surfaces by a combined use of bacteriophages and probiotics: potential assanitizing agents. Infection and Drug Resistance. 2018;11:1015–1026. DOI: 10.2147/IDR.S170071. PMCID: PMC6071622. PMID: 30104889.

Afinogenova AG, Kraeva LA, Ainogenov GE, Veretennikov VV. [Probiotic-based sanitation as alternatives to chemical disinfectants]. Russian Journal of Infection and Immunity. 2017;4(7):419–424. Russian. doi: 10.15789/2220-7619-2017-4-419-424.

##submission.downloads##

Номер

Розділ

Статті