DOI: https://doi.org/10.26641/1997-9665.2018.3.146-150

Поляризаційна кореляційна електронно-оптична мікроскопія (PCLEM). Перше попереднє повідомлення.

O. V. Gradov

Анотація


Запропоновано конструкцію поляризаційної приставки для кореляційної електронної та оптичної мікроскопії (т.зв. CLEM) у вакуумній камері від скануючого електронного мікроскопа TESLA BS-300 з багатовісним гоніометричний столом, що заміщає столи типу Федорова (3-5-вісні) і спеціалізовані для коноскопіческіх поляризаційних вимірювань . Дана система може бути впроваджена також в ESEM - Environmental Scanning Electron Microscopy, тобто в камері з контрольованим середовищем / атмосферою.


Ключові слова


кореляційна електронна і світлова мікроскопія; скануюча електронна мікроскопія в контрольованих атмосферах; п’ятивісний столик Федорова на карданних передачах; поляризаційний мікроскоп; гоніометричний стіл електронного мікроскопа

Повний текст:

PDF (Русский)

Посилання


van Rijnsoever C, Oorschot V, Klumperman J. Correlative light-electron microscopy (CLEM) combining live-cell imaging and immuno-labeling of ultrathin cryosections. Nat Methods. 2008;5(11):973-80. doi:10.1038/nmeth.1263.

Paez-Segala MG, Sun MG, Shtengel G, Viswanathan S, Baird MA, Macklin JJ, Patel R, Allen JR, Howe ES, Piszczek G, Hess HF, Davidson MW, Wang Y, Looger LL. Fixation-resistant photo-activatable fluorescent proteins for CLEM. Nat Methods. 2015;12(3):215-8.

Padman BS, Ramm G. Live-cell CLEM of subcellular targets: an optimized procedure for polymer-based imaging substrates. Methods Cell Biol. 2014;124:275-303. doi:10.1016/B978-0-12-801075-4.00013-6.

Padman BS, Bach M, Ramm G. An improved procedure for subcellular spatial alignment during live-cell CLEM. PLoS One. 2014;9(4):95967. doi:10.1371/journal.pone.0095967.

Haraguchi T, Osakada H, Koujin T. Live CLEM imaging to analyze nuclear structures at high resolution. Methods Mol Biol. 2015;1262:89-103. doi:10.1007/978-1-4939-2253-6_6.

Schorb M, Sieckmann F. Matrix MAPS-an intuitive software to acquire, analyze, and annotate light microscopy data for CLEM. Methods Cell Biol. 2017;140:321-33. doi:10.1016/bs.mcb.2017.03.012.

Heiligenstein X, Paul-Gilloteaux P, Raposo G, Salamero J. eCCLEM: A multidimension, multimodel software to correlate intermodal images with a focus on light and electron microscopy. Methods Cell Biol. 2017;140:335-52. doi:10.1016/bs.mcb.2017.03.014.

Reddick LE, Alto NM. Correlative light and electron microscopy (CLEM) as a tool to visualize microinjected molecules and their eukaryotic sub-cellular targets. J Vis Exp. 2012;(63):3650. doi:10.3791/3650.

Yamanaka R, Hirasaka Y, Jin M, Yanagisawa H, Yasunaga T. Metallothionein labeling for CLEM method for identification of protein subunits. Microscopy. 2014;63(1):32. doi:10.1093/jmicro/dfu065.

Luckner M, Wanner G. Precise and economic FIB/SEM for CLEM: with 2 nm voxels through mitosis. Histochem Cell Biol. 2018;150(2):149-70. doi:10.1007/s00418-018-1681-x.

Rizzo NW, Duncan KE, Bourett TM, Howard RJ. Backscattered electron SEM imaging of resin sections from plant specimens: observation of histological to subcellular structure and CLEM. J Microsc. 2016;263(2):142-7. doi:10.1111/jmi.12373.

Marion J, Le Bars R, Satiat-Jeunemaitre B, Boulogne C. Optimizing CLEM protocols for plants cells: GMA embedding and cryosections as alternatives for preservation of GFP fluorescence in Arabidopsis roots. J Struct Biol. 2017;198(3):196-202. doi:10.1016/j.jsb.2017.03.008.

Ader NR, Kukulski W. triCLEM: Combining high-precision, room temperature CLEM with cryofluorescence microscopy to identify very rare events. Methods Cell Biol. 2017;140:303-20. doi:10.1016/bs.mcb.2017.03.009.

Li S, Ji G, Shi Y, Klausen LH, Niu T, Wang S, Huang X, Ding W, Zhang X, Dong M, Xu W, Sun F. High-vacuum optical platform for cryo-CLEM (HOPE): A new solution for non-integrated multiscale correlative light and electron microscopy. J Struct Biol. 2018;201(1):63-75. doi:10.1016/j.jsb.2017.11.002.

Romero-Brey I. 3D Electron Microscopy (EM) and Correlative Light Electron Microscopy (CLEM) Methods to Study Virus-Host Interactions. Methods Mol Biol. 2018;1836:213-36. doi:10.1007/978-1-4939-8678-1_11.

Booth DG, Beckett AJ, Molina O, Samejima I, Masumoto H, Kouprina N, Larionov V, Prior IA, Earnshaw WC. 3D-CLEM Reveals that a Major Portion of Mitotic Chromosomes Is Not Chromatin. Mol Cell. 2016;64(4):790-802. doi:10.1016/j.molcel.2016.10.009.

Khalid K, Noh MAM, Khan MN, Ishak R, Penney E, Chowdhury ZZ, Hamzah MH, Othman M. Giant vesicles (GV) in colloidal system under the optical polarization microscope (OPM). Micron. 2017;100:30-3. doi:10.1016/j.micron.2017.04.010.

Bruck A, Sahar E, Agmon E, Shinitzky M. Fluorescence polarization microscope for automatic screening of membrane fluidity of individual cells. Appl Opt. 1977;16(3):564-7. doi:10.1364/AO.16.000564.

Akazawa K, Okuno R, Hosono T. Sarcomere lengths of thick skeletal muscle specimens measured under an epiillumination-type polarization microscope. Front Med Biol Eng. 2001;11(1):59-71.

Romhányi G. On the submicroscopic structure of the elastic fibres of the bovine ligamentum nuchae as revealed by the polarization microscope. Acta Morphol Acad Sci Hung. 1965;13(4):397-409.

Romhányi G. Submicroscopic structure of elastic fibres as observed in the polarization microscope. Nature. 1958;182(4640):929-30.

Shin IH, Shin SM, Kim DY. New, simple theory-based, accurate polarization microscope for birefringence imaging of biological cells. J Biomed Opt. 2010;15(1):016028. doi:10.1117/1.3327280.

Illing RB, Wässle H. Visualization of the HRP reaction product using the polarization microscope. Neurosci Lett. 1979;13(1):7-11.

Asakura S. Crystallographic studies on the eggs of various human parasites. I. Observation with polarization microscope. Tohoku J Exp Med. 1956;64(2):105-15.

Gradov OV, Gradova MA. Methods of electron microscopy of biological and abiogenic structures in artificial gas atmospheres. Surface En-gineering and Applied Electrochemistry. 2016;52(1):117–25.

Gradov OV, Gradova MA. Cryoelectron microscopy as a functional instrument for system biology, structural analysis and experimental manipulations with living cells. Problems of Cryobilogy and Cryomedicine. 2014;24(3):193–210.




Morphologia