Особливості будови та клітинного складу панкреатолієнальних гемолімфовузлів людини.

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2016.1.77-86

Ключові слова:

гемолімфатичні вузли, макрофаги, еритрофагоцитоз, ліпофусцин, гемосидерин, гістіоцити морської блакиті, меланомакрофаги

Анотація

За допомогою стандартних гістологічних, а також гістохімічних методів для виявлення заліза, ліпофусцинів і компонентів жовчі, було досліджено панкреатолієнальні гемолімфатичні вузли (ГЛВ) людини. Встановлено, що до ГЛВ притікає суміш крові та лімфи; у ході циркуляції крізь системи синусів усі еритроцити руйнуються шляхом фагоцитозу макрофагами. Залізо, що вивільняється в результаті розщеплення гемоглобіну, макрофаги виділяють у середовище, що їх оточує, а неперетравлені мембрани еритроцитів піддаються перекисному окисленню ліпідів і накопичуються всередині клітин у вигляді ліпофусцину.

Посилання

Sakita K, Fujino M, Koshikawa T, Ohmiya N, Ohbayashi M, Asai J. Structure and function of the hemolymph node in rats. Nagoya J Med Sci. 1997 Nov;60(3-4):129-37.

Yoon YS, Lee JS, Shin JW. Age-related morphological studies on hemal node and hemolymph node in Korean native goat. Korean Journal of Veterinary Research. 1999;39(5):865-77.

Zidan M, Pabst R. Histology of hemal nodes of the water buffalo (Bos bubalus). Cell Tissue Res. 2010 Jun;340(3):491-6. doi: 10.1007/s00441-010-0962-z.

Zidan M, Pabst R. Histological, histochemical and immunohistochemical study of the haemal nodes of the dromedary camel. Anat Histol Embryol. 2004 Oct;33(5):284-9.

Thorp BH, Seneque S, Staute K, Kimpton WG. Characterization and distribution of lymphocyte subsets in sheep hemal nodes. Dev Comp Immunol. 1991 Fall;15(4):393-400.

Merkulov GA. [The course of histopathologic techniques]. 5th ed., rev.and enl. Leningrad: Meditsina; 1969. 423 p. Russian.

Suvarna K, Layton C, Bancroft JD. Ban-croft’s theory and practice of histological tech-niques. 7th ed. Churchill Livingstone Elsevier, 2013. 654 p.

Lillie RD, author; Portugalov VV, editor of translation. [Histopathologic technic and practical histochemistry]. Moscow: Mir; 1969. 639 p. Rus-sian.

Pearse E, author; Portugalov VV, editor of translation. [Histochemistry theoretical and applied]. Moscow: Izdatelstvo inostrannoi literatury; 1962. 962 p. Russian.

Zhang W, Yasuda M, Hosaka YZ, Nasu T. Scanning electron microscopic study of the vascular system in the hemal node of the bovine cervical region. J Vet Med Sci. 2013 Jan 31;75(1):79-83.

Nopajaroonsri C, Luk SC, Simon GT. The structure of the hemolymph node – a light, transmis-sion, and scanning electron microscopic study. J Ultrastruct Res. 1974;48(3):325-41. doi:10.1016/ S0022-5320(74)80003-1.

Pellas TC, Weiss L. Deep splenic lymphatic vessels in the mouse: a route of splenic exit for recirculating lymphocytes. Am J Anat. 1990 Apr;187(4):347-54.

Slusarczyk K, Marniok B, Rudnicki P. Effect of splenectomy on the morphology of haemolymph splenic nodes in Wistar rats. Med Sci Monit. 2000 Jul-Aug;6(4):675-9.

Slusarczyk K, Marniok B, Ekkert M. Effect of the ligation of spleen neurovascular pedicle on the morphology of hemolymph splenic nodes in Wistar rats. Med Sci Monit. 2000 May-Jun;6(3):486-90.

Hogg CM, Reid O, Scothorne RJ. Studies on hemolymph nodes. III. Renal lymph as a major source of erythrocytes in the renal hemolymph node of rats. J Anat. 1982 Sep;135(Pt 2):291-9.

Sasaki K. Erythrophagocytosis of the lymph node macrophages caused by autotransplantation of the splenic tissue into the lymph nodes of rat. Anat Anz. 1990;171(5):335-42.

Kong W, Duan X, Shi Z, Chang Y. Iron metabolism in the mononuclear phagocyte system. Progress in Natural Science. 2008;18(10):1197-202. doi:10.1016/j.pnsc.2008.03.024.

Tenhunen R, Marver HS, Schmid R. The enzymatic catabolism of hemoglobin: stimulation of microsomal heme oxygenase by hemin. J Lab Clin Med. 1970 Mar;75(3):410-21.

Cairo G, Recalcati S, Mantovani A, Locati M. Iron trafficking and metabolism in macrophages: contribution to the polarized phenotype. Trends Immunol. 2011 Jun;32(6):241-7. doi: 10.1016/j.it.2011.03.007.

Cerutti P, Guerrero F. Erythropoiesis and erythrophagocytosis in bovine haemal nodes. Int J Morphol. 2008;26(3):557-62.

Clark KG, Davidson WM. Bone marrow lipofuscin. J Clin Pathol. 1972 Nov;25(11):947-50.

Bigorgne C, Le Tourneau A, Messing B, Rio B, Giraud V, Molina T, Audouin J, Diebold J. Sea-blue histiocyte syndrome in bone marrow secondary to total parenteral nutrition including fat-emulsion sources: a clinicopathologic study of seven cases. Br J Haematol. 1996 Nov;95(2):258-62.

Suzuki O, Abe M. Secondary sea-blue histiocytosis derived from Niemann-Pick disease. J Clin Exp Hematop. 2007 Apr;47(1):19-21.

Howard MR, Kesteven PJ. Sea blue histiocytosis: a common abnormality of the bone marrow in myelodysplastic syndromes. J Clin Pathol. 1993 Nov;46(11):1030-2.

Hendriks HR, Eestermans IL. Phagocytosis and lipofuscin accumulation in lymph node macrophages. Mech Ageing Dev. 1986 Jul;35(2):161-7. doi: 10.1016/0047-6374(86)90006-0.

Hübscher SG, Harrison RF. Portal lymphadenopathy associated with lipofuscin in chronic cholestatic liver disease. J Clin Pathol. 1989 Nov;42(11):1160-5.

Terman A, Brunk UT. Lipofuscin. Int J Biochem Cell Biol. 2004 Aug;36(8):1400-4.

Terman A, Dalen H, Brunk UT. Ceroid/lipofuscin-loaded human fibroblasts show decreased survival time and diminished autophagocytosis during amino acid starvation. Exp Gerontol. 1999 Dec;34(8):943-57.

Walls R, Kumar KS, Hochstein P. Aging human erythrocytes. Differential sensitivity of young and old erythrocytes to hemolysis induced by peroxide in the presence of thyroxine. Arch Biochem Biophys. 1976 Jun;174(2):463-8.

Vigliano FA, Bermúdez R, Quiroga MI, Nieto JM. Evidence for melanomacrophage centres of teleost as evolutionary precursors of germinal centres of higher vertebrates: an immunohistochemical study. Fish Shellfish Immunol. 2006 Oct;21(4):467-71.

Carrasco-Marín E, Alvarez-Domínguez C, López-Mato P, Martínez-Palencia R, Leyva-Cobián F. Iron salts and ironcontaining porphyrins block presentation of protein antigens by macrophages to MHC class II-restricted T cells. Cell Immunol. 1996 Aug 1;171(2):173-85.

##submission.downloads##

Номер

Розділ

Статті