Просте методичне пристосування для мікроін'єкторних маніпуляцій і вимірювань на електроморфологічному чипі при мікроінтерферометричному контролі інтерфейсних і мембранних процесів на діапазоні товщини від 50 до 10000 ангстрем під різними кутами
DOI:
https://doi.org/10.26641/1997-9665.2017.4.7-17Ключові слова:
мікроелектроди, мікроінтерферометр, мікроперфузія, патч-кламп, мікроманіпуляція, перфузія одиночних клітин, цитоелектрофізіологічний чіпАнотація
Мікроманіпуляції, перфузії і вимірювання, що проводяться з використанням скляних мікроелектродів, заповнених, як правило, електролітом, є класичною технікою експериментально-морфологічних і мембранно-електрофізіологічних досліджень на рівні окремих клітин і мембранних поверхонь. Стандартний (ефективний) діаметр скляного мікроелектрода в кінцевій області становить від 500 нм до менш ніж 100 нм, що перешкоджає використанню стандартних оптичних мікроскопів для його спостереження, відповідно до оптичних критеріїв (критерій Релєя і т.п.), оскільки при діаметрі конуса менше 500 нм він губиться в інтерференційної облямівці. Мікропроцесорним програмуванням пуллера (мікрокузні), що забезпечує витягування і розрив, хоча і можна досягти в відомих режимах заданих форм і діаметра кінця мікропіпеток, цей результат не є в повній мірі контрольованим в силу вищевказаних обмежень. У зв'язку з цим необхідне створення пристроїв контролю кінцевого фрагмента мікропіпеток як при отриманні, так і при експлуатації (внутрішньоклітинному або екстрацелюлярному введенні) в штатному режимі. При цьому необхідно, щоб даний метод дозволяв візуалізувати на зображенні клітини з мікроелектродами в реальному часі процеси, що відбуваються між ними, в залежності від типу і стану електрода, що дозволить нівелювати артефакти, з частотою систематичної помилки, що виникають при неконтрольованій експлуатації кінця мікропіпеток після застосування різних способів заливки електроліту (капілярного по Тасакі; вакуумного заповнення; заповнення спиртом з подальшим витісненням спирту по еквівалентній об'ємній характеристиці електролітом; заливка легкоплавкими сплавами як альтернатива рідким електролітам, що полегшує введення контакту хлорсрібного дроту). Нами пропонується конфігурація установки, що вирішує всі вищевказані проблеми шляхом введення інтерферометричного пристрою для мікроскопічного контролю мікроелектродів і мікроманіпулятора або мікроперфузора, вперше для даного типу оптичних приладів комбінованого з інтерферометричною оптичною схемою.
Посилання
Scarpelli EM, Mautone AJ. Surface biophysics of the surface monolayer theory is incompatible with regional lung function. Biophysical journal. 1994;67(3):1080-9. doi: 10.1016/S0006-3495(94)80573-9
Rutishauser U. Polysialic acid at the cell surface: biophysics in service of cell interactions and tissue plasticity. Journal of cellular biochemistry. 1998;70(3):304-12. doi: 10.1002/(SICI)1097-4644(19980901)70:3<304::AID-JCB3>3.0.CO;2-R
Beales PA. Biophysics: A toehold in cell surface dynamics. Nature Nanotechnology. 2017;12:404–6. doi: 10.1038/nnano.2017.20
Longsworth LG. Experimental Tests of an Interference Method for the Study of Diffusion. Journal of the American Chemical Society. 1947;69(10):2510-6. doi: 10.1021/ja01202a077
Kegeles G, Gosting LJ. The theory of an interference method for the study of diffusion. Journal of the American Chemical Society. 1947;69(10):2516-23. doi: 10.1021/ja01202a078
Gosting LJ, Hanson EM, Kegeles G., Morris MS. Equipment and experimental methods for inter-ference diffusion studies. Review of Scientific Instruments. 1949;20(3):209-15. doi: 10.1063/1.1741490
Gosting LJ, Morris MS. Diffusion studies on dilute aqueous sucrose solutions at 1 and 25 with the Gouy interference method. Journal of the American Chemical Society. 1949;71(6):1998-2006. doi: 10.1021/ja01174a028
Longsworth LG. Tests of Flowing Junction Diffusion Cells with Interference Methods. Review of Scientific Instruments. 1950;21(6):524-8. doi: 10.1063/1.1745641
Gosting LJ, Akeley DF. A Study of the Diffusion of Urea in Water at 25° with the Gouy Interference Method. Journal of the American Chemical Society. 1952;74(8):2058-60. doi: 10.1021/ja01128a060
Lyons MS, Thomas JV. Diffusion Studies on Dilute Aqueous Glycine Solutions at 1 and 25° with the Gouy Interference Method. Journal of the American Chemical Society. 1950;72(10):4506-11. doi: 10.1021/ja01166a047
Lyons PA, Sandquist CL. A study of the diffusion of n-butyl alcohol in water using the Gouy interference method. Journal of the American Chemical Society. 1953;75(16):3896-9. doi: 10.1021/ja01112a007
Gosting LJ, Onsager L. A general theory for the Gouy diffusion method. Journal of the American Chemical Society. 1952;74(23):6066-74. doi: 10.1021/ja01143a071
Chatterjee A. Diffusion Studies of Bovine Plasma Albumin at 25° with the Help of Jamin Interference Optics. Journal of the American Chemical Society.1964;86(18):3640-2. doi: 10.1021/ja01072a010
Chatterjee A. Measurement of the diffusion coefficients of sucrose in very dilute aqueous solutions using Jamin interference optics at 25. Journal of the American Chemical Society. 1964;86(5):793-5. doi: 10.1021/ja01059a009
Gueudré L, Binder T, Chmelik C, Hibbe F, Ruthven DM, Kärger J. Micro-imaging by interference microscopy: A case study of orientation-dependent guest diffusion in MFI-type zeolite host crystals. Materials. 2012;5(4):721-40. doi: 10.3390/ma5040721
Kärger J, Schemmert ULF., Vasenkov S. Application of interference microscopy – a novel route to study intracrystalline zeolitic diffusion. Adsorption Science and Technology: Proceedings of the Second Pacific Basin Conference on Adsorption Science and Technology: Brisbane, Australia, 14-18 May 2000. World Scientific, 2000:324. doi: 10.1142/9789812793331_0065.
Heinke L, Kortunov P, Tzoulaki D, Castro M, Wright PA, Kärger J. Three-dimensional diffusion in nanoporous hostguest materials monitored by interference microscopy. EPL (Europhysics Letters). 2007;81(2):26002. doi: 10.1209/0295-5075/81/26002
Gueudré L, Chmelik C, Kärger J. Diffusion anisotropy in a single crystal of silicalite-1 studied by interference microscopy. Diffusion Fundamentals. 2011;16:45.1-45.2
Heinke L, Kortunov P, Tzoulaki D, Kärger J. The options of interference microscopy to explore the significance of intracrystalline diffusion and surface permeation for overall mass transfer on na-noporous materials. Adsorption. 2007;13(3-4):215-23. doi: 10.1007/s10450-007-9048-y
Karge HG, Kärger J. Application of IR spectroscopy, IR microscopy, and optical interference microscopy to diffusion in zeolites. Adsorption and Diffusion. Springer Berlin Heidelberg, 2008:135-206.
Schemmert U, Kärger J, Weitkamp J. Interference microscopy as a technique for directly measuring intracrystalline transport diffusion in zeolites. Microporous and Mesoporous Materials. 1999;32(1):101-10. doi: 10.1016/S1387-1811(99)00095-5
Geier O, Vasenkov S, Lehmann E, Kärger J, Rakoczy RA, Weitkamp J. 19-O-04-Interference microscopy as a tool of choice for investigating the role of crystal morphology in diffusion studies. Studies in Surface Science and Catalysis. 2001;135:154. doi: 10.1016/S0167-2991(01)81257-X
Kärger J, Heinke L, Kortunov P, Vasenkov S. Looking into the crystallites: diffusion studies by interference microscopy. Studies in Surface Science and Catalysis. 2007;170:739-47. doi: 10.1016/S0167-2991(07)80915-3
Lauerer A, Binder T, Haase J, Kärger J, Ruthven D.M. Diffusion of propene in DDR crystals studied by interference microscopy. Chemical Engi-neering Science. 2015;138:110-17.
Beran PŘE, Vojáčková S, Porsch B. Determination of the diffusion coefficients of T1+, As 3+, phenol, and quinolin-8-ol using the polarized light interference method. Journal of the Chemical Society, Chemical Communications. 1975;22:908a. doi: 10.1039/C3975000908A
Holmes DE, Gatos HC. Convective Interference and “Effective” Diffusion-Controlled Segregation during Directional Solidification under Stabilizing Vertical Thermal Gradients; Ge. Journal of The Electrochemical Society. 1981;128(2):429-37.
Brudney N, Saunders L. A study by the Gouy interference method of the diffusion in water of potassium laurate. Journal of the Chemical Society. 1955:2916-21. doi: 10.1039/JR9550002916
Pierobon M, Akyildiz IF. A statistical–physical model of interference in diffusion-based molecular nanonetworks. IEEE Transactions on communications. 2014;62(6):2085-95. doi: 10.1109/TCOMM.2014.2314650
Chertkov VG, Chalykh AY. Polarization-interference micromethod for the study of mutual diffusion in polymer systems. Polymer Bulletin. 1988;19(5):487-92. doi: 10.1007/BF00263919
Kozenkov VM, Belyaev VV, Tumovskii GD, Spakhov AA. Translational and Rotation Self-Diffusion in Polymeric Systems Including Photo-and Thermo-Polymerized Systems by an Interference-Holography Method and a Method of Photo-Induced Optical Anisotropy //Reaction Kinetics in Condensed Matter RKCM’10-Moscow:128. doi: 10.1.1.456.9766. Russian.
Taylor CV. The contractile vacuole in Euplotes: An example of the solgel reversibility of cytoplasm. Journal of Experimental Zoology Part A: Ecological Genetics and Physiology. 1923;37(3):259-89. doi: 10.1002/jez.1400370302
Bensley RR. Plasmosin. The geland fiber-forming constituent of the protoplasm of the hepatic cell. The Anatomical Record. 1938;72(3):351-69. doi: 10.1002/ar.1090720308
Seifriz W. Solgel transformation of protoplasm. Revue d'hematologie. 1949;5(5-6):591-602.
Reiner JM. A proposed mechanism for the solgel transformations. The Bulletin of Mathematical Biophysics. 1965;27(1):105-112. doi: 10.1007/BF02477266
Munder MC, Midtvedt D, Franzmann TM, Nueske E, Malinovska L, Otto O. A solgel transition of the cytoplasm driven by adaptive intracellular pH changes promotes entry into dormancy. Molecular Biology Of The Cell. 2015;26:8120.
Kondo H. Ultrastructural consideration on the nature, sol and gel, of the aqueous cytoplasm in embedment-free section electron microscopy. Ad-vances in colloid and interface science. 2010;160(1):49-55. doi: 10.1016/j.cis.2010.07.003
Martínez-Cancino R, Sotero RC. Modeling the effect of cytoplasm solgel transitions on magnetization changes during MRI diffusion experi-ments in brain gray matter // International Journal of Bioelectromagnetism. 2008;10(4):269-80.
Lewin RA. Sol-to-gel changes in the proto-plasm of prokaryotic algae. Algological Studies / Archiv für Hydrobiologie. 1994;1:67-71.
Janmey PA. Gelsol transition of the cytoplasm and its regulation. AIP Conference Proceed-ings. 1991;226(1):304-25. doi: 10.1063/1.40599
Luby-Phelps K. The Cytoplasm of Living Cells as a Reversible Gel Network. Physical Networks: Polymers and gels. 1990:345 p.
Nilsson L. Å. Qualitative analysis of acute phase protein antisera with the comparative interference diffusion-in-gel technique. International Archives of Allergy and Immunology. 1968;33(1):16-28.
Koyuncu I, Brant J, Lüttge A, Wiesner MR. A comparison of vertical scanning interferometry (VSI) and atomic force microscopy (AFM) for characterizing membrane surface topography. Journal of Membrane Science. 2006;278(1):410-7. doi: 10.1016/j.memsci.2005.11.039
Farinas J, Verkman AS. Cell volume and plasma membrane osmotic water permeability in epithelial cell layers measured by interferometry. Biophysical journal. 1996;71(6):3511-22. doi: 10.1016/S0006-3495(96)79546-2
Haruna M, Yoden K, Ohmi M, Seiyama A. Detection of phase transition of a biological membrane by precise refractive-index measurement based on the low coherence interferometry. Proc. SPIE. 2000;3915:188-93. doi: 10.1117/12.384155
Honglin M, Zhihao Q. [Stretching Deformation Analysis of Biology Membrane Material by Interferometry Phaseshift Method]. Journal of Nanjing Normal University (Natural Science Edition). 2009;32(03):42-6. Chinese.
Zilker A, Engelhardt H, Sackmann E. Dynamic reflection interference contrast (RIC-) microscopy: a new method to study surface excitations of cells and to measure membrane bending elastic moduli. Journal De Physique. 1987;48(12):2139-51. doi: 10.1051/jphys:0198700480120213900
Lambacher A, Fromherz P. Orientation of hemicyanine dye in lipid membrane measured by fluorescence interferometry on a silicon chip. The Journal of Physical Chemistry B. 2001;105(2):343-6. doi: 10.1021/jp002843i
Chupa JA, McCauley JP, Strongin RM, Smith AB, Blasie JK, Peticolas LJ, Bean JC. Vecto-rially oriented membrane protein monolayers: profile structures via X-ray interferometry/holography. Biophysical journal. 1994;67(1):336-48. doi: 10.1016/S0006-3495(94)80486-2
Gupta S, Dura JA, Freites JA, Tobias DJ, Blasie JK. Structural characterization of the voltage-sensor domain and voltage-gated K+-channel proteins vectorially oriented within a single bilayer membrane at the solid/vapor and solid/liquid interfaces via neutron interferometry. Langmuir. 2012;28(28):10504-20. doi: 10.1021/la301219z
Izzard CS, Lochner LR. Cell-to-substrate contacts in living fibroblasts: an interference reflexion study with an evaluation of the technique. Journal of cell science. 1976;21(1):129-59.
Baksh MM, Kussrow AK, Mileni M, Finn MG, Bornhop DJ. Label-free quantification of membrane-ligand interactions using backscattering interferometry. Nature biotechnology. 2011;29(4):357-60. doi: 10.1038/nbt.1790
Baksh MM, Lockwood A, Richards C, Finn MG, Heidary D. Label-Free Molecular Observations of Membrane-Associated Species using Backscatter-ing Interferometry. Biophysical Journal. 2015;108(2):617a.
Gerhart J, Haddad-Weiser G, Kussrow A, Bornhop D, Flowers R, Thévenin D. Backscattering Interferometry: Seeing Membrane Proteins in a New Light. Biophysical Journal. 2015;108(2):253a.
Payne JA, Lee TH, Anderson MA, Aguilar MI. Examination of the Interaction between a Membrane Active Peptide and Artificial Bilayers by Dual Polarisation Interferometry. Bioprotocol. 2017;7(1):e2087. doi: 10.21769/BioProtoc.2087
Hirn R, Bayerl TM, Rädler JO, Sackmann E. Collective membrane motions of high and low amplitude, studied by dynamic light scattering and micro-interferometry. Faraday discussions. 1999;111:17-30. doi: 10.1039/A807883A
Dana KJ. Three dimensional reconstruction of the tectorial membrane: an image processing method using Nomarski differential interference contrast microscopy (Doctoral dissertation, Massachusetts Institute of Technology). MIT, 1992, 96 p.
Barroca T, Bon P, Lévêque-Fort S, Fort E. Supercritical self-interference fluorescence microscopy for full-field membrane imaging. Proc. SPIE. 2013:858911. doi: 10.1117/12.2003736
Gandorfer A, Scheler R, Schumann R, Haritoglou C, Kampik A. Interference microscopy delineates cellular proliferations on flat mounted internal limiting membrane specimens. British Journal of Ophthalmology. 2009;93(1):120-2. doi: 10.1136/bjo.2008.146514
Erokhova LA, Novikov SM, Lazarev GL, Kazakova TA, Orlov DA, Indukaev KV, Maksimov GV. [Study of regular intracellular and membrane processes in neurons by laser interference microscopy]. Bulletin of experimental biology and medicine. 2005;140(2):262-4. doi: 10.1007/s10517-005-0461-5. Russian.
Wilson AD. Inplane displacement of a stressed membrane with a hole measured by holographic interferometry. Applied optics. 1971;10(4):908-12. doi: 10.1364/AO.10.000908
Röhler R, Sieger C. Analysis of asymmetrical membrane vibrations by holographic interferometry. Optics Communications. 1978.25(3):297-300. doi: 10.1016/0030-4018(78)90132-3
Ghislain LP, Webb WW. Force and membrane compliance measurements using laser interferometry and optical trapping. Proc. SPIE (Holography, Interferometry, and Optical Pattern Recognition in Biomedicine III). 1993;1889:212-4. doi: 10.1117/12.155726
Cheung DCL, Barnes TH, Haskell TG. Feedback interferometry with membrane mirror for adaptive optics. Optics communications. 2003;218(1):33-41. doi: 10.1016/S0030-4018(03)01188-X
Kaizuka Y, Groves JT. Hydrodynamic damping of membrane thermal fluctuations near surfaces imaged by fluorescence interference microscopy. Physical review letters. 2006;96(11):118101. doi: 10.1103/PhysRevLett.96.118101
Eom J, Park SJ, Lee BH. Noncontact photoacoustic tomography of in vivo chicken chorioallantoic membrane based on all-fiber heterodyne interferometry. Journal of biomedical optics. 2015;20(10):106007. doi: 10.1117/1.JBO.20.10.106007
Pande P, Shelton RL, Monroy GL, Nolan RM, Boppart SA. A mosaicking approach for in vivo thickness mapping of the human tympanic membrane using low coherence interferometry.Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 2016;17(5):403-16. doi: 10.1007/s10162-016-0576-6
Hernandez-Montes MDS, Santoyo FM, Munoz S, Perez C, de la Torre M, Flores M, Alvarez, L. Surface strainfield determination of tympanic membrane using 3D-digital holographic interferometry. Optics and Lasers in Engineering, 2015;71:42-50. doi: 10.1016/j.optlaseng.2015.03.008
Kimura Y. [Experimental study of the vibration analysis of tympanic membrane by holographic interferometry]. Nippon Jibiinkoka Gakkai Kaiho. 1981;84(8):880-9. Japan.
del Socorro Hernández-Montes M, Solis SM, Santoyo FM. 3-D Digital holographic interferometry as a tool to measure the tympanic membrane motion. Proc. SPIE. 2012;8413:A-1-A-6. doi: 10.1117/12.978227
O'Neill MP, Bearden A. The amplitude and phase of basilar membrane motion in the turtle measured with laser-feedback interferometry. Bio-physics of Hair Cell Sensory Systems. World Scien-tific Singapore, 1993;398-405.
Watanabe H, Kysar JW, Lalwani AK.. Microanatomic analysis of the round window membrane by white light interferometry and microcomputed tomography for mechanical amplification. Otology & Neurotology. 2014;35(4):672-8.
King-Smith P, Fink BA, Nichols JJ, Nichols KK, Hill RM, Markakis GA. In vivo Measurement of the Thickness of Human Corneal Endothelium and Descemet's Membrane Using Interferometry. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2002;43(13):157.
O'Brien RN, Zhao B. A new optical liquid membrane study technique: I. Use of holographic interferometry to obtain the refractive index of liquid membrane components. Journal of membrane science. 1984;20(3):297-304. doi: 10.1016/S0376-7388(00)82006-2
Levy D, Weiser K. Use of a laser beam in-terference technique for the determination of the minority carrier diffusion length in layers of a p-n junction. Applied physics letters. 1995;66(14):1788-90. doi: 10.1063/1.113322
Kim H, Patel BS, Kegeles G. Interference optical studies of restricted diffusion. The Journal of Physical Chemistry. 1962;66(10):1960-6. doi: 10.1021/j100816a035
Marucci M, Pettersson SG, Ragnarsson G, Axelsson A. Determination of a diffusion coefficient in a membrane by electronic speckle pattern interferometry: a new method and a temperature sensitivity study. Journal of Physics D: Applied Physics. 2007;40(9):2870-80. doi: 10.1088/0022-3727/40/9/031
Hook L, Davis WW, Kotin L. High-Speed Calculation of Diffusion Coefficients from Rayleigh Interference Fringes. Applied Optics. 1963;2(1):65-6. doi: 10.1364/AO.2.000066
Seufert WD, O'Brien RN. Determination of diffusion coefficients from the progression of interference fringes. The Journal of Physical Chemistry. 1984;88(5):829-32. doi: 10.1021/j150649a001
He M, Guo Y, Zhong Q, Zhang Y. A New Method of Processing Mach–Zehnder Interference Fringe Data in Determination of Diffusion Coefficient. International Journal of Thermophysics. 2009;30(6):1823-37. doi: 10.1007/s10765-009-0685-0
Vasil'eva VI, Shaposhnik VA, Grigorchuk OV, Petrunya IP. The membrane–solution interface under high-performance current regimes of electrodialysis by means of laser interferometry. Desalination. 2006;192(1-3):408-14. doi: 10.1016/j.desal.2005.06.055
Mahlab D, Yosef NB, Belfort G. Intrinsic membrane compaction and aqueous solute studies of hyperfiltration (reverse-osmosis) membranes using interferometry. ACS Symposium Series 1981;153:147–58 doi: 10.1021/bk-1981-0153.ch010
Fernández-Sempere J, Ruiz-Beviá F, Salcedo-Díaz R, García-Algado P. Diffusion studies in polarized reverse osmosis processes by holographic interferometry. Optics and Lasers in Engineering. 2008;46(12):877-87. doi: 10.1016/j.optlaseng.2008.02.004
Fernández-Sempere J, Ruiz-Beviá F, Salcedo-Díaz R, Garcia-Algado P. Measurement of concentration profiles by holographic interferometry and modelling in unstirred batch reverse osmosis. Industrial & engineering chemistry research. 2006;45(21):7219-31. doi: 10.1021/ie060417z
Fernández-Sempere J, Ruiz-Beviá F, García-Algado P, Salcedo-Díaz R. Experimental study of concentration polarization in a crossflow reverse osmosis system using Digital Holographic Interfer-ometry. Desalination. 2010;257(1):36-45. doi: 10.1016/j.desal.2010.03.010
Fernández-Sempere J, Ruiz-Beviá F, Salcedo-Díaz R, García-Algado P. Buoyancy effects in deadend reverse osmosis: visualization by holographic interferometry. Industrial & engineering chemistry research. 2007;46(6):1794-802. doi: 10.1021/ie061433z
Fernández Sempere J. et al. Visualization by digital holographic interferometry of flux velocity effect in cross-flow reverse osmosis. Póster presentado en 11th Mediterranean Congress of Chemical Engineering, Barcelona, October 21-24, 2008. http://rua.ua.es/dspace/handle/10045/15257
Xu Q, Tian W, You Z, Xiao J. Multiple beam interference model for measuring parameters of a capillary. Applied optics. 2015;54(22):6948-54. doi: 10.1364/AO.54.006948
Zhang Y, Xu M, Tian W, Xu Q, Xiao J. Analysis of three-dimensional interference patterns of an inclined capillary. Applied optics. 2016;55(22):5936-44. doi: 10.1364/AO.55.005936
Rosenwald SE, Nowall WB, Dontha N, Kuhr WG. Laser interference pattern ablation of a carbon fiber microelectrode: Biosensor signal enhancement after enzyme attachment. Analytical chemistry. 2000;72(20):4914-20.
Qi SW, Liu AP, Lu HG. Research on the method of measurement of nonlinear refractive index of optical materials by interference of capillary. Advanced Materials Research. 2012;490:3468-71. doi: 10.4028/www.scientific.net/AMR.490-495.3468
Qi S, Liu Y, Yang X, Xu T, Chen G, Zhang C, Tian J. Measurement of nonlinear refractive index of ethyl red by interference of capillary. Optics Communications. 2008;281(23):5902-4. doi: 10.1016/j.optcom.2008.08.044
Nisi H. Measurement of Capillary Constants of Viscous Liquids by Means of Interference Fringes. Proceedings of the Physico-Mathematical Society of Japan. 3rd Series. 1919;1(3):40-2. doi: 10.11429/ppmsj1919.1.3_40
Kubota M. Interference effects in a capillary arc excitation source for emission spectrometry. Analytica Chimica Acta. 1978;96(1):55-62. doi: 10.1016/S0003-2670(01)93395-1
Deng Y, Li B. Oncolumn refractive-index detection based on retroreflected beam interference for capillary electrophoresis. Applied optics. 1998;37(6):998-1005. doi: 10.1364/AO.37.000998
Jicun R, Yanzhuo D, Jieke C. [Separation and Determination of Polylols by High-performance Capillary Electrophoresis With Laser-based Interference Refractive Index Detector]. Chinese Journal of Analytical Chemistry. 1993;21(12):1374-7. Chinese.
Peng W, Liu Y, Zhang X, Cheng F, Han M. High sensitivity evanescent field refractometer based on modal interference in micro-capillary wall. IEEE Sensors Journal. 2014;14(2):430-5. doi: 10.1109/JSEN.2013.2283972
Sørensen HS, Larsen NB, Latham JC, Bornhop DJ, Andersen PE. Highly sensitive bio-sensing based on interference from light scattering in capillary tubes. Applied physics letters. 2006;89(15):151108. doi: 10.1063/1.2356380
Sonehara T, Kojima K, Irie T. Fluorescence correlation spectroscopy excited with a stationary interference pattern for capillary electrophoresis. Analytical chemistry. 2002;74(19):5121-31. doi: 10.1021/ac0201326
Xiong B, Miao X, Zhou X, Deng Y, Zhou P, Hu J. Simultaneous coaxial thermal lens spectroscopy and retro-reflected beam interference detection for capillary electrophoresis. Journal of Chromatog-raphy A. 2008;1209(1):260-6. doi: 10.1016/j.chroma.2008.09.042
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2017 Morphologia
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative commons Attribution 4.0 International (CC BY 4.0), яка дозволяє іншим особам вільно поширювати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи в цьому журналі.
Автори, направляючи рукопис до редакції журналу «Morphologia», погоджуються з тим, що редакції передаються права на захист і використання рукопису (переданого до редакції матеріалу, в тому числі таких об'єктів, що охороняються авторським правом, як фотографії автора, малюнки, схеми, таблиці і т.п.), в тому числі на відтворення в пресі і в мережі Інтернет; на поширення; на переклад рукопису на будь-які мови; експорту та імпорту примірників журналу зі статтею Авторів з метою поширення, доведення до загального відома. Зазначені вище права Автори передають Редакції без обмеження терміну їх дії і на території всіх країн світу без обмеження.
Автори гарантують, що вони мають виняткові права на використання матеріалів, переданих до редакції. Редактори не несуть відповідальності перед третіми особами за порушення гарантії, надані авторами. Розглянуті права передаються до редакції з моменту підписання поточної публікації для публікації. Відтворення матеріалів, опублікованих в журналі іншими особами та юридичними особами, можливе лише за згодою редакції, з обов'язковим зазначенням повної бібліографічного посилання первинної публікації. Автори залишають за собою право використовувати опублікований матеріал, його фрагменти і частини для навчальних матеріалів, усні презентації, підготовку дисертації дисертації з обов'язковою бібліографічною посиланням на оригінальну роботу. Електронна копія опублікованій статті, що завантажується з офіційного веб-сайту журналу в форматі .pdf, може бути розміщена авторами на офіційному веб-сайті їх установ, будь-яких інших офіційних ресурсах з відкритим доступом.
