Особливості розподілу рецепторів до лектину арахісу на клітинах регенерату у щурів з моделюваним переломом за умов використання імплантів з різного матеріалу

Автор(и)

  • П.В. Богданов Запорізький державний медико-фармацевтичний університет, Запоріжжя, Україна https://orcid.org/0000-0002-1533-6370

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2025.3.158-161

Ключові слова:

експериментальна модель, перелом, регенерат, імплант, остеосинтез.

Анотація

Актуальність. До рецепторів лектинів відносять вуглеводовмісні біополімерні молекули клітин та позаклітинного матриксу, що здатні вибірково взаємодіяти з лектинами з утворенням лектин-рецепторних комплексів. Завдяки таким властивостям лектини відіграють важливу роль в процесах клітинного розпізнавання та міжклітинної взаємодії. Лектини беруть участь у запальних процесах. Визначення гістотопографії рецепторів до лектинів та її змін дозволяє встановити динаміку морфогенезу, імунної відповіді та міжклітинні взаємодії в тканинах. Метою дослідження було встановити особливості та динаміку розподілу рецепторів до лектину арахісу на клітинах регенерату у щурів з модельованим переломом за умов використання імплантів з різних матеріалів. Методи. В роботі досліджено регенерат великогомілкової кістки 48 білих щурів. Тварин було поділено на 4 групи по 6 в кожній. В експериментальні три групи увійшли 36 щурів, яким було змодельовано перелом великогомілкової кістки з інтрамедулярним введенням імплантів з різних матеріалів (1 група – вуглець вуглецевий композит, 2 група – магнієвий сплав МС-10, 3 група – медична іржостійка сталь). 4 група – контрольні щури, яким моделювали неповний поперечний діафізарний перелом без інтрамедулярної фіксації. Дослідження проводили на 7 та 14 добу. Вилучену кістку фіксували у 10% формаліні з подальшою декальцинацією, зневодненням у висхідній батареї спиртів та заливали у парафін. Виготовляли гістологічні препарати. Для виявлення рецепторів вуглеводних залишків β-D-Gal ставили лектингістохімічну реакцію з лектином арахісу (PNA) виробництва «Лектинтест» (м. Львів). Отримані результати оцінювали напівкількісним методом. Результати. Було встановлено характер змін щільності рецепторів до залишків β-D-Gal у сполучнотканинних елементах регенерату кісткової тканини у щурів з інтрамедулярним введенням імплантів з різних матеріалів. Найбільша щільність рецепторів до лектину арахісу (PNA) спостерігалась на лімфоцитах та сполучнотканинних клітинах регенерату у тварин з інтрамедулярним введенням вуглець вуглецевого композиту та магнієвого сплаву, що свідчить про виражену реакцію з боку імунної системи. Підсумок. Встановлено характер змін щільності рецепторів до залишків β-D-Gal у сполучнотканинних елементах регенерату кісткової тканини у щурів з інтрамедулярним введенням імплантів з різних матеріалів. Найбільша щільність рецепторів до лектину арахісу (PNA) спостерігалась на лімфоцитах та сполучнотканинних клітинах регенерату у тварин з інтрамедулярним введенням вуглець вуглецевого композиту та магнієвого сплаву, що свідчить про виражену реакцію з боку імунної системи.

Посилання

Kaltner H, Abad-Rodríguez J, Corfield AP, Kopitz J, Gabius H. The sugar code: letters and vocabulary, writers, editors and readers and biosignificance of functional glycan–lectin pairing. Biochemical Journal. 2019;476(18):2623-55. doi: 10.1042/ bcj20170853.

Zhao T, Terracciano R, Becker J, Monaco A, Yilmaz G, Becer CR. Hierarchy of Complex Glycomacromolecules: From Controlled Topologies to Biomedical Applications. Biomacromolecules. 2022;23(3):543-75. doi: 10.1021/acs.biomac. 1c01294.

Li M, Abeyrathne C, Langley DP, Cossins LR, Samudra AN, Green GW, et al. Highly specific lubricin-lectin electrochemical sensor for glycoprotein cancer biomarker detection. Electrochimica Acta. 2023;457:142508. doi: 10.1016/ j.electacta.2023.142508.

Hinz B, Pittet P, Smith-Clerc J. Myofibroblast development is characterized by specific cell-cell adherens junctions. Mol. Biol. Cell. 2004;15:4310–20.

Kusch AG. [Lectins in imunomorfolohiyi]. World of Medicine and Biology. 2014;4(47):150-7. Ukrainian. https://womab.com.ua/ua/smb-2014-04-2/4734.

Bohdanov PV. [Development of a method for experimental modeling of tubular bone fractures in rats]. Morphologia. 2024;18(3):145-148. Ukrainian. doi: 10.26641/1997-9665.2024.3.145-148.

World Medical Association. World Medical Association Declaration of Helsinki: Ethical Principles for Medical Research Involving Human Subjects. JAMA. 2013;310(20):2191–2194. doi: 10.1001/jama.2013.281053.

Marinou KA, Dontas IA. European Union Legislation for the Welfare of Animals Used for Scientific Purposes: Areas Identified for Further Discussion. Animals. 2023;13(14):2367–77. doi: 10.3390/ ani13142367.

Yuehuei H, Martin KL, editors. Handbook of Histology Methods for Bone and Cartilage. Totowa: Humana Press Inc.; 2003. 587 p.

Hewitson TD, Darby IA, editors. Histology Protocols. Methods in Molecular Biology. Totowa: Humana Press; 2010. doi: 10.1007/978-1-60327-345-9.

Rhodes JM, Milton JD, editors. Lectin methods and protocols. Totowa, New Jersey: Humana Press Inc.; 1998. 572 p.

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-12-08

Номер

Розділ

Статті