Ремоделювання кукси кістки під впливом різних режимів механічного навантаження

Автор(и)

  • Д.В. Бондаренко Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова, Вінниця, Україна https://orcid.org/0000-0001-8305-5899
  • Ю.О. Безсмертний Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова, Вінниця, Україна https://orcid.org/0000-0002-1388-7910
  • В.І. Шевчук Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова, Вінниця, Україна
  • Г.В. Безсмертна Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова, Вінниця, Україна https://orcid.org/0000-0003-1505-4872
  • Р.В. Бурлака Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова, Вінниця, Україна https://orcid.org/0009-0002-5361-5300

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2025.4.19-29

Ключові слова:

ампутація, кісткова тканина, ремоделювання, терміни.

Анотація

Актуальність. Не дивлячись на давність операції ампутації кінцівки, до цього часу не висвітлені терміни початку та величини механічного навантаження кукси. Мета: дослідити оптимальні терміни та величини початку механічного навантаження кукси кістки після ампутації. Матеріал та методи. Проведено дві серії дослідів на 18 кролях з ампутацією стегна в середній третині і міопластикою. В контрольній серії через 4, 8, 16 тижнів на кінець кукси кістки проводили циклічне механічне навантаження з енергію 0,5 мДЖ/мм2 частотою 2 Гц, з подачею 400 імпульсів за сеанс. В дослідній серії в ті самі терміни навантаження проводили двічі на день по 200 імпульсів за сеанс. Терміни спостереження 6, 10, 18 тижнів. Метод дослідження гістологічний з заливкою судин 10 % туш-желатиновою сумішшю. Результати. В контрольній серії в більшості дослідів відмічалось патологічне ремоделювання кісткової тканини з розвитком атрофії, порушенням форми кістки, її викривленням, стресові переломи. В дослідній серії сформовані органотипічні кукси з нормалізацію структури і мікроциркуляції. Кращі результати ремоделювання кісткової тканини отримані в серії з початком механічних навантажень в обох серіях в термін 10 тижнів через 8 тижнів після ампутації. Підсумок. Механічне щоденне навантаження кукси кістки енергією 0,5 мДж/мм2, частотою 2 Гц, подачею 400 імпульсів за сеанс в терміни 4, 8, 16 тижнів викликає значні порушення ремоделювання кісткової тканини з формуванням конусоподібних та булавоподібних кукс, відхиленням кінця від вісі та стресовими переломами. Таке ж навантаження (0,5 мДж/мм2, частотою 2 Гц, подачею 400 імпульсів) розділене на два сеанси на день по 200 імпульсів з інтервалом 4 години сприяє формуванню органотипічної циліндричної форми кукси з рівновагою резорбтивних та репаративних процесів. Початок механічних навантажень через 8 тижнів після ампутації не викликає значних порушень ремоделювання кісткової тканини кукси і є найбільш оптимальним.

Посилання

Ma Q, Miri Z, Haugen HJ, et al. Significance of mechanical loading in bone fracture healing, bone regeneration, and vascularization. J Tissue Eng. 2023;14:20417314231172573. doi: 10.1177/ 20417314231172573.

Liang W, Wu X, Dong Y, et al. Mechanical stimuli-mediated modulation of bone cell function-implications for bone remodeling and angiogenesis. Cell Tissue Res. 2021;386(3):445-54. doi: 10.1007/ s00441-021-03532-6.

Nokhbatolfoghahaei H, Bohlouli M, Adavi K, et al. Computational modeling of media flow through perfusion-based bioreactors for bone tissue engineering. Proc Inst Mech Eng H. 2020;234(12): 1397-408. doi: 10.1177/0954411920944039.

Taylor B, Poka A. Osteomyoplastic Transtibial Amputation: The Ertl technique. J Am Acad Orthop Surg. 2016;24(4):259-65. doi: 10.5435/ JAAOS-D-15-00026.

Robling AG, Robin D, Fuchs RK, et al. Mechanical adaptation. In: Burr DB, Allen MR. (eds) Basic and applied bone biology [2nd ed.]. Cambridge, MA: Academic Press; 2019:203-33. doi: 10.1146/annurev.bioeng.8.061505.095721.

Zhang ZY, Teoh SH, Chong WS, et al. A biaxial rotating bioreactor for the culture of fetal mesenchymal stem cells for bone tissue engineering. Biomaterials 2009;30(14):2694-704. doi: 10.1016/j.biomaterials.2009.01.028.

Trompet D, Melis S, Chagin AS, Maes C. Skeletal stem and progenitor cells in bone development and repair. J Bone Miner Res. 2024;39(6):633-54. doi: 10.1093/jbmr/zjae069.

Srivastava RK, Sapra L, Mishra PK. Osteometabolism: Metabolic Alterations in Bone Pathologies. Cells. 2022;11(23):3943. doi: 10.3390/ cells11233943.

Robling AG, Castillo AB, Turner CH. Biomechanical and molecular regulation of bone remodeling. Annu Rev Biomed Eng 2006;8:455-98. doi: 10.1016/B978-0-12-813259-3.00011-7

Bemben DA, Sherk VD, Ertl WJJ, Bemben MG. Acute bone changes after lower limb amputation resulting from traumatic injury. Osteoporos Int. 2017; 28(7):2177-86. doi: 10.1007/s00198-017-4018-z.

Mauntel TC, Marshall SW, Hackney AC, et al. Trunk and Lower Extremity Movement Patterns, Stress Fracture Risk Factors, and Biomarkers of Bone Turnover in Military Trainees. J Athl Train. 2020;55(7):724-32. doi: 10.4085/1062-6050-134-19.

Flint JH, Wade AM, Stocker DJ, et al. Bone mineral density loss after combat-related lower extremity amputation. J Orthop Trauma. 2014;28(4): 238-44. doi: 10.1097/BOT.0b013e3182a66a8a.

Sherk VD, Bemben MG, Bemben DA. BMD and bone geometry in transtibial and transfemoral amputees. J Bone Miner Res. 2008;23(9):1449-57. doi: 10.1359/jbmr.080402.

Hoellwarth JS, Oomatia A, Tetsworth K, et al. Bone density changes after five or more years of unilateral lower extremity osseointegration: Observational cohort study. Bone Rep. 2023;18:101682. doi: 10.1016/j.bonr.2023.101682.

Islamoglu I, Çebi M, Tosun FC. The bone mineral density and isokinetic knee strength in amputee soccer players. Rev Assoc Med Bras (1992). 2023;69(8):e20230100. doi: 10.1590/1806-9282.20230100.

Gailey R, Gaunaurd I, Raya M, et al. Effectiveness of an Evidence-Based Amputee Rehabilitation Program: A Pilot Randomized Controlled Trial. Phys Ther. 2020;100(5):773-87. doi: 10.1093/ ptj/pzaa008.

Montanez J, Kairy D, Gilbert M, et al. "I would not want my leg back": Living experiences of adult amputees following intensive functional rehabilitation. Rehabil Psychol. 2025;70(4):392-404. doi: 10.1037/rep0000617.

Wang L, Dong J, Xian CJ. Computational Modeling of Bone Cells and Their Biomechanical Behaviors in Responses to Mechanical Stimuli. Crit Rev Eukaryot Gene Expr. 2019;29(1):51-67. doi: 10.1615/CritRevEukaryotGeneExpr.2019025150.

Shevchuk V, Bezsmertnyi Y, Branitsky O, et al. Remodeling of the Fibula Stump After Transtibial Amputation. Orthop Res Rev. 2024;16:153-62. doi: 10.2147/ORR.S459927.

Aalaa M, Vahdani AM, Mohajeri Tehrani M, et al. Epidemiological Insights into Diabetic Foot Amputation and its Correlates: A Provincial Study. Clin Med Insights Endocrinol Diabetes. 2024;17: 11795514241227618. doi: 10.1177/ 11795514241227618.

Shevchuk VI, Bezsmertnyi YO, Bezsmertna HV, et al. Changes in the structural organization of bone after amputation. Polish Annals of Medicine. 2020;27(2):147-53. doi: 10.29089/2020.20.00121.

Shevchuk VI, Bezsmertnyi YO, Bezsmertna HV, et al. Reparative regeneration at the end of bone filing after ostoplastic amputation. Wiad Lek. 2021;74:413-7. PMID: 33813442.

European Convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. Strasburg: Council of Europe. 1986;123:52. Available from: https://rm.coe.int/ 168007a67b.

Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the Protection of Animals Used for Scientific Purposes. Off J Eur Union. 2010;53(L276):33–79.

Zakon Ukrainy. Pro zakhyst tvaryn vid zhorstokogo povodzhennia [Law of Ukraine. On the protection of animals from cruelty]. Vidomosti Verkhovnoi Rady Ukrainy (VVR). 2006;27:230. Available from: http://zakon1.rada.gov.ua/laws/ show/3447-15.

Stetsula VI, Devyatov AA. [Transosseous osteosynthesis in traumatology]. Kyiv: Zdorov’ya; 1987. 200 p. Available from: http://library.zsmu. edu.ua/cgi/irbis64r_14/fulltext/Travmatologija%20i%20ortopedija/SteculaVI87_Chresk_os.pdf

Augat P, Simon U, Liedert A, et al.. Mechanics and mechano-biology of fracture healing in normal and osteoporotic bone. Osteoporos Int 2005; 16(2):S36-S43.

Willie BM, Zimmermann EA, Vitienes I, et al. Bone adaptation: Safety factors and load predictability in shaping skeletal form. Bone. 2020;131:115114. doi: 10.1016/j.bone.2019.115114.

Finco MG, Kim S, Ngo W, Menegaz RA. A review of musculoskeletal adaptations in individuals following major lower-limb amputation. J Musculoskelet Neuronal Interact. 2022;22(2):269-83. PMID: 35642706.

Hoyt BW, Lundy AE, Colantonio DF, et al. Hounsfield Unit-Calculated Bone Mineral Density Loss Following Combat-Related Lower Extremity Amputations. J Bone Joint Surg Am. 2023;105(22): 1786-92. doi: 10.2106/JBJS.22.01258.

Thomson S, Lu W, Zreiqat H, et al. Proximal bone remodeling in lower limb amputees reconstructed with an osseointegrated prosthesis. J Orthop Res. 2019;37(12):2524-30. doi: 10.1002/jor.24445.

Wiedemann-Fodé E, Schiavi-Tritz J, Kerdjoudj H, Laurent C. Effects of mechanical stimuli on bone cells for regenerative medicine: A review of recent experimental and computational methods. Med Eng Phys. 2025;142:104369. doi: 10.1016/ j.medengphy.2025.104369.

Pinzur MS, Gottschalk FA, Pinto MA, Smith DG. Controversies in lower extremity amputation. J Bone Joint Surg Am. 2007;89(5):1118-27. doi: 10.2106/00004623-200705000-00028.

Bemben DA, Sherk VD, Ertl WJJ, Bemben MG. Acute bone changes after lower limb amputation resulting from traumatic injury. Osteoporos Int. 2017; 28(7):2177-86. doi: 10.1007/s00198-017-4018-z.

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-10-30

Номер

Розділ

Статті