Динаміка змін в шарах рогівки ока щура наприкінці четвертого тижня експериментального стрептозотоцинового цукрового діабету

Автор(и)

  • Kh.I. Rudnytska Львівський національний медичний університет імені Данила Галицького, Львів, Україна
  • M.I. Servetnyk Львівський національний медичний університет імені Данила Галицького, Львів, Україна
  • N.O. Ambarova Львівський національний медичний університет імені Данила Галицького, Львів, Україна
  • V.F. Simonov «Grace Clinic», Київ, Україна
  • A.P. Hrytsenko «Grace Clinic», Київ, Україна
  • I.V. Tverdokhlib Дніпровський державний медичний університет, Дніпро, Україна

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2024.3.104-109

Ключові слова:

око, рогівка, експеримент, патологія, діабет, щур.

Анотація

Актуальність. Офтальмологічні ускладнення цукрового діабету і сьогодні становлять величезну медичну та соціальну проблему у всьому світі. Враховуюче вищезгадане, діабетичне ураження структур очного яблука і надалі залишається актуальною проблемою можливого розвитку діабетичного ураження рогівки. Метою нашого дослідження стало з’ясувати особливості мікроструктурної перебудови рогівки щура наприкінці четвертого тижня експериментального стрептозотоциніндукованого цукрового діабету. Методи. Дослідження проводили на 15 статевозрілих, безпородних білих щурах–самцях, масою 120-130 г. Експериментальний цукровий діабет викликали шляхом одноразового внутрішньоочеревинного введення стрептозотоцину фірми "Sigma" з розрахунку 7 мг на 100 г маси тіла (приготованому на 0,1 моль цитратному буфері, рΗ=4,5). Розвиток цукрового діабету контролювали впродовж 2 тижнів за зростанням рівня глюкози в крові, яку вимірювали глюкозооксидазним методом. Дослідження проводили з четвертого тижня експерименту на тваринах з рівнем глюкози понад 15,58 ммоль на 1 л. У роботі використовували 2 групи тварин: 1 ‑ група (10 тварин) ‑ з цукровим діабетом, що розвинувся (4 тижні після введення стрептозотоцину); 2 ‑ група була контрольною (5 тварин), отримували ін'єкції 0,9% фізіологічного розчину упродовж 4 тижнів Препарати для гістологічного дослідження готували за загальноприйнятою методикою. Мікроскопічні дослідження та фотографування препаратів здійснювали за допомогою мікроскопа МБІ – 1 і цифровим фотоапаратом Nicon D 3100. Результати та підсумок. Як показали наші дослідження, на більшості ділянок зовнішній епітелій був збережений, проте в клітинах базального, середнього та поверхневого шарів реєстрували альтеративні зміни. Клітини базального шару розташовувались нещільно. В базальному шарі траплялись епітеліоцити з вакуолізованою цитоплазмою та з ущільненим, однорідно базофільним, пікнотичним ядром. Клітини середнього та поверхневого шарів зовнішнього епітелію рогівки місцями розташовувались хаотично. У цих шарах також зустрічались епітеліоцити з вакуолізованою цитоплазмою. У наслідок дистрофічних та некротичних змін клітин базального та середнього шару в пласті зовнішнього епітелію рогівки траплялись вогнища деструктивно змінених епітеліальних клітин. Окрім цього, у задній частині строми рогівки матрикс забарвлювався неоднорідно, в окремих пластинках був дрібнозернистого ацидофільного вигляду. Кератоцити розташовувались розріджено. Цитоплазма окремих кератоцитів набухала, у ній була локалізована надмірна кількість нагромаджених дрібних ацидофільних зерен. Між сполучнотканинними пластинками строми рогівки та десцеметовою мембраною також траплялись ділянки набряку. Ендотелій передньої камери ока на окремих ділянках відшаровувався від десцеметової мембрани. Були присутні ділянки виточення рогівки де відзначали зменшення кількості рядів клітин середнього та поверхневого шарів. Між сполучнотканинними пластинками строми рогівки та десцеметовою мембраною також траплялись ділянки набряку з відшаруванням ендотелію передньої камери від десцеметової мембрани. Вивчення структурної перебудови у шарах рогівки наприкінці четвертого тижня експериментального стрептозотоциніндукованого цукрового діабету дасть можливість провести порівняння глибини патоморфологічних змін на різних термінах, що в подальшому сприятиме створенню патоморфологічного підгрунття для встановлення оптимальних з точки зору морфології термінів проведення медикаментозної корекції змін у шарах рогівки у субхронічний терміни впливу гіперглікемії з метою стабілізації виникаючих та в подальшому прогресуючих явищ діабетичного кератиту.

Посилання

Fong DS, Aiello L, Gardner TW, et al. American Diabetes Association. Retinopathy in diabetes. Diabetes Care. 2004;27(1):84-87.

Сheung N, Wong TY. Diabetic retinopathy and systemic vascular complications. Prog. Retin. Eye Res. 2008;27(2):161-176.

Liew G, Wong TY, Mitchell P, et al. Retinopathy predicts coronary heart disease mortality. Heart. 2009;95(5):391-394.

Vijan S, Hofer TP, Hayward RA. Cost-utility analysis of screening intervals for diabetic retinopathy in patients with type 2 diabetes mellitus. JAMA. 2000;283(7):889-896.

Kempen JH, O’Colmain BJ, Leske MC, et al. Eye Diseases Prevalence Research Group. The prevalence of diabetic retinopathy among adults in the United States. Arch. Ophthalmol. 2004;122(4):552-563.

Chang YS, Tai MC, Ho CH, Chu CC, Wang JJ, Tseng SH, Jan RL. Risk of Corneal Ulcer in Patients with Diabetes Mellitus: A Retrospective Large-Scale Cohort Study. Sci Rep. 2020;10(1):73-88.

Wang B, Yang S, Zhai HL, Zhang YY, Cui CX, Wang JY, Xie LX. A comparative study of risk factors for corneal infection in diabetic and non-diabetic patients. Int. J. Ophthalmol. 2018;11(1):43-47.

Badawi AE, Moemen D, El-Tantawy NL. Epidemiological, clinical and laboratory findings of infectious keratitis at Mansoura Ophthalmic Center, Egypt. Int. J. Ophthalmol. 2017;10(1):61-67.

Hovind P, Tarnow L, Rossing K, et al. Decreasing incidence of severe diabetic microangiopathy in type 1 diabetes. Diabetes Care. 2003;26(4):1258-1264.

Nordwall M, Bojestig M, Arnqvist HJ, et al. Diabetes Complications Study. Declining incidence of severe retinopathy and persisting decrease of nephropathy in an unselected population of type 1 diabetes. Diabetologia. 2004;47(7):1266-1272.

Bloomgarden ZT, Drexler A. Fibrate use in diabetes. New concepts. J. Diabetes. 2011;3(1):1-2.

Kronschläger MN, Talebizadeh YuZ, Meyer LM, Löfgren S. Apoptosis in Rat Cornea After In Vivo Exposure to Ultraviolet Radiation at 300 nm. Cornea. 2015;34(8):945–949. DOI: 10.1097/ICO.0000000000000498.

Wilson SE. Corneal wound healing. Exp. Eye Res. 2020;197:108089. DOI: 10.1016/j.exer.2020.108089.

Lovald ST, Rau A, Nissman S, et al. Finite element analysis and experimental evaluation of penetrating injury through the cornea. J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 2017;66: 104–110. DOI:10.1016/j.jmbbm.2016.11.001.

Belknap EB. Corneal Emergencies. Top Companion Anim. Med. 2015;30(3):74–80. DOI: 10.1053/j.tcam.2015.07.006.

Slobodyan OM, Vovk OYu, Chelpanova I.V, Hnidyk YuV. [Morphofunctional features of the structural components of the eyeball in a comparative-species aspect and in various pathological processes (review article)]. Morphologia. 2022;16(3):7–14. Ukrainian. DOI: 10.26641/1997-9665.2022.3.7-14

Barrientez B, Nicholas SE, Whelchel A, et al. Corneal injury: Clinical and molecular aspects. Exp. Eye Res. 2019;5:186. DOI: 10.1016/j.exer.2019.107709.

Ebenezar OO, Roney A, Goswami DG, et al. Ocular injury progression and cornea histopathology from chloropicrin vapor exposure: Relevant clinical biomarkers in mice. Exp. Eye Res. 2023;230:109440. DOI: 10.1016/j.exer.2023.109440.

Turchyn MV, Volkov KS, Klishch IM, Borys RM. [Histological and electron microscopic study of keratoxenoimplant with different types of preservation]. Zdobutky klinichnoyi i eksperymentalʹnoyi medytsyny. 2016;25(1):73-77. Ukrainian. DOI: 10.11603/1811-2471.2016.v25.i1.6033

Horalskyi LP, Khomych VT, Kononskyi OI. [Basics of histological technique and morphofunctional research methods in normal and pathological conditions]. Zhytomyr: Polissia. 2015. 286 p. Ukrainian.

##submission.downloads##

Опубліковано

2024-10-30

Номер

Розділ

Статті