Аналітична і кількісна оцінка стану селезінки та імунних процесів у щурів за умов введення отрути гадюк виду Vipera berus

Автор(и)

  • A.M. Bobr Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова, Вінниця, Україна https://orcid.org/0000-0003-3657-2302

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2024.3.20-25

Ключові слова:

отрута змій, щурі, селезінка, морфометрія.

Анотація

Актуальність. Селезінка здатна підтримувати стійкість організму у відповідь на дію фізичних та хімічних факторів навколишнього середовища. Однак, за умов їх хронічного впливу, резерви імунного статусу органу значно страждають та виснажуються внаслідок порушення морфології та функцій ключових структурних елементів. В зв’язку з цим серед наукових досліджень сьогодення з’являються все більше тих, що зосереджені на вивченні патофізіологічних шляхів ураження селезінки при впливі несприятливих факторів різного генезу. Мета. Встановлення морфометричних параметрів змін в селезінці щурів при впливі отрути гадюк виду Vipera berus. Методи. Для оцінки токсичного впливу отрут змій Vipera berus berus та Vipera berus nikolskii на загальну морфологію селезінки та прояви антиген-залежних імунних процесів у ній, нами було проведено порівняння дискретних і безперервних змінних у щурів з контрольної та двох експериментальних груп. Результати та підсумок. Встановлено, що патологічний вплив отрути Vipera berus nikolskii на червону пульпу призводить до сукупності процесів, які збільшують її загальну площу, таким чином вирівнюючи співвідношення білої пульпи до червоної у цій групі. Найбільш яскраво вираженим зростання частки лімфатичних вузликів відносно червоної пульпи є саме у щурів, що зазнали дії отрути Vipera berus berus, що свідчить про інтенсивні процеси проліферації лімфоцитів саме при дії цього токсину. Сильна гемолітична дія отрути Vipera berus nikolskii призводить до руйнування формених елементів крові і накопичення їх часточок, які теж фагоцитують макрофаги. Це додає ще один фактор навантаження на фагоцитуючі клітини, призводячи до їх перевантаження і порушення нормальних процесів метаболізму і екзоцитозу.

Посилання

Bolon I, Durso AM, Mesa SB, Ray N, Alcoba G, Chappuis F, Ruiz de Castaneda R. Identifying the snake: first scoping review on practices of communities and healthcare providers confronted with snakebite across the world. PLoS One. 2020;15(3):e0229989. URL: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0229989.

Di Nicola MR, Pontara A, Kass GEN, Kramer NI, Avella I, Pampena R, Paolino G. Vipers of major clinical relevance in Europe: Taxonomy, venom composition, toxicology and clinical management of human bites. Toxicology. 2021;453:152724. Doi: 10.1016/j.tox.2021.152724.

Gutiérrez JM, Calvete JJ, Habib AG, Harrison RA, Williams DJ, Warrell DA. Snakebite envenoming. Nat Rev Dis Primers. 2017;3:17063. Doi: 10.1038/nrdp.2017.63.

Hermansen MN, Krug AH, Tjønnfjord E, Brabrand M. Envenomation by the common European adder (Vipera berus): a case series of 219 patients. Eur J Emerg Med. 2019;26(5):362-365. Doi: 10.1097/MEJ.0000000000000577.

Jayakrishnan MP, Geeta MG, Krishnakumar P, Rajesh TV, George B. Snake bite mortality in children: beyond bite to needle time. Arch Dis Child. 2017;102(5):445-449. Doi: 10.1136/archdischild-2016-311142.

Alangode A, Rajan K, Nair BG. Snake antivenom: Challenges and alternate approaches. Biochem Pharmacol. 2020;81:114135. Doi: 10.1016/j.bcp.2020.114135.

Herzig V, Cristofori-Armstrong B, Israel MR, Nixon SA, Vetter I, King GF. Animal toxins – nature’s evolutionary-refined toolkit for basic research and drug discovery. Biochem Pharmacol. 2020;181:114096. URL: https://doi.org/10.1016/j.bcp.2020.114096.

Simoes-Silva R, Alfonso J, Gomez A, Holanda RJ, Sobrinho JC, Zaqueo KD, Soares AM. Snake venom, a natural library of new potential therapeutic molecules: challenges and current perspectives. Curr Pharm Biotechnol. 2018;19(4):308-335. Doi: 10.2174/1389201019666180620111025.

Xiao H, Pan H, Liao K, Yang M, Huang C. Snake venom PLA2, a promising target for broad-spectrum antivenom drug development. Biomed Res Int. 2017;2017:6592820. Doi: 10.1155/2017/6592820

Feriani DJ, Sousa AS, Delbin MA, Ruberti OM, Crestani CC, Rodrigues B. Spleen tissue changes after restraint stress: effects of aerobic exercise training. Stress. 2021;24(5):572-583. Doi: 10.1080/10253890.2021.1895112.

Li Y, Du X, Zhao Y, Wang J, Wang J. Fluoride can damage the spleen of mice by perturbing Th1 / Th2 cell balance. Biol Trace Elem Res. 2021;199(4):1493-1500. Doi: 10.1007/s12011-020-02264-y.

Sang X, Zheng L, Sun Q, Li N, Cui Y, Hu R, Gao G, Cheng Z, Cheng J, Gui S. The chronic spleen injury of mice following long-term exposure to titanium dioxide nanoparticles. J. Biomed. Mater. Res. Part A. 2012;100:894–902. doi: 10.1002/jbm.a.34024

Reddy RV, Taylor MJ, Sharma RP. Evaluation of citrinin toxicity on the immune functions of mice. J. Food Prot. 1988;51:32–36. doi: 10.4315/0362-028X-51.1.32.

Höhn A, Grune T. Lipofuscin: formation, effects and role of macroautophagy. Redox Biology. 2013;1(1):140-144. https://doi.org/10.1016/j.redox.2013.01.006.

##submission.downloads##

Опубліковано

2024-10-30

Номер

Розділ

Статті