Мікроструктурна організація шарів рогівки щура в нормі

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2024.2.97-101

Ключові слова:

рогівка, оболонки ока, норма, експеримент, патологія, щур.

Анотація

Актуальність. Вивчення структурної організації тканин окремих органів піддослідних лабораторних тварин є необхідним на сьогодні питанням у зв’язку з їх чисельним використанням в експериментальній медицині з метою моделювання патологічних процесів та вивчення патоморфологічних проявів в динаміці. Враховуючи виключну роль рогівки і складність її організації надзвичайно важливо розуміти особливості її будови з метою створення морфологічного субстрату норми, з яким в подальшому буде проводитись порівняльна характеристика отриманого матеріалу на різних термінах перебігу змодельованого патологічного процесу. Це висвітлено у ряді фахових вітчизняних та зарубіжних наукових публікацій і стосується вивчення динаміки патоморфологічних змін у ряді структур. З вище зазначеного на сьогодні у вітчизняній та зарубіжній фаховій літературі є достатньо інформації щодо будови сітківки на мікрорівні, але ми вирішили доповнити і розширити це питання завдяки власним дослідженням, що стосуються морфологічної організації шарів рогівки щурів. Тому, вважаю, що дане дослідження є актуальним як з точки зору експериментальної морфології, так і з практичної точки зору. Метою нашого дослідження стало детальне вивчення пошарової будови рогівки щура в нормі. Методи. Дослідження проводили на 15 статевозрілих, безпородних білих щурах–самцях, масою 120-130 г. У роботі використовували 1 групу тварин: (15 тварин) – інтактні. Для мікроскопічного дослідження використовували очні яблука щурів (пересікалися по ділянці лімба). Препарати для гістологічного дослідження готували за загальноприйнятою методикою. Мікроскопічні дослідження та фотографування препаратів здійснювали за допомогою мікроскопа МБІ – 1 і цифровим фотоапаратом Nicon D 3100. Результати. Як показали наші дослідження, на мікроструктурному рівні рогівки інтактних лабораторних щурів чітко візуалізується багатошаровий плоский не зроговілий епітелій (передній епітелій), власна речовина (строма рогівки) та ендотелій (задній епітелій рогівки). Багатошаровий плоский незроговілий передній епітелій рогівки на більшості ділянок утворює 3-5 клітинних рядів, які формують три основні клітинні шари: базальний, середній та поверхневий. Власна речовина (строми рогівки) товста, масивна, утворена чисельними чітко впорядкованими сполучнотканинними пластинками, з добре організованими волокнами колагенового матриксу. Глибше розташовується Десцеметова мембрана (задня погранична пластинка), яка вкриває задню поверхню власної речовини рогівки. Десцеметова мембрана, яка містить колагенові волокна та аморфну речовину є базальною мембраною заднього епітелію (ендотелію) рогівки. Задній епітелій рогівки (ендотелій передньої камери ока) збережений, представлений одним шаром плоских клітин, які щільно прилягають до десцеметової мембрани та відмежовують задню поверхню рогівки від скловидної рідини передньої камери ока. Дані результати у майбутньому дозволять створити мікро морфологічне підгрунття норми з метою використання його при проведенні порівняння виникаючих змін в шарах рогівки при експериментальному моделюванні вивчаємих нозологій різного генезу. У майбутньому це надасть можливість встановити найбільш оптимальний період з метою проведення корекції і як наслідок стабілізації проявів патологічного впливу .

Посилання

Sridhar MS. Anatomy of cornea and ocular surface. Indian J Ophthalmol. 2018;66(2):190-194. doi: 10.4103/ijo.IJO_646_17. PMID: 29380756; PMCID: PMC5819093.

Courson JA, Rumbaut RE, Burns AR. Impact of Obesity and Age on Mouse Corneal Innervation at the Epithelial-Stromal Interface. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2024;65(5):11. doi: 10.1167/iovs.65.5.11.

Eghrari AO, Riazuddin SA, Gottsch JD. Overview of the Cornea: Structure, Function, and Development. Prog Mol Biol Transl Sci. 2015;134:7-23. doi: 10.1016/bs.pmbts.2015.04.001. Epub 2015 Jun 4. PMID: 26310146.

Herasymyuk IYe. Shkilniuk IM. [Peculiarities of the structure of the organ of vision and its blood supply in normal rabbits]. Bulletin of morphology. 2010;16(3):516–520.

Kovalenko VM, Stefanov OV, Maksymov YuM, Trahtenberh IM. Eksperymentalne vyvchennia toksychnoi diyi potentsiynyh likarskyh zasobiv. [Experimental study of the toxic effect of potential medicinal products]. Kyiv : Avicena, 2001. 588 p.

Harkovenko RV, Pushkar MS, Yashchenko AM. [Lectin histochemistry of the retina and optic nerve of rats in normal conditions and with hyperhomocysteinemia]. The world of biology and medicine. 2009;3(1):173–179.

Jiang MS, Yuan Y, Gu ZX, Zhuang SL. Corneal confocal microscopy for assessment of diabetic peripheral neuropathy: A meta-analysis. Br. J. Ophthalmol. 2015;100:9–14.

Tavakoli M, Mitu-Pretorian M, Petropoulos IN, Fadavi H, Asghar O, Alam U, Ponirakis G, Jeziorska M, Marshall A, Efron N. Corneal Confocal Microscopy Detects Early Nerve Regeneration in Diabetic Neuropathy After Simultaneous Pancreas and Kidney Transplantation. Diabetes. 2012;62:254–260.

Tavakoli M, Kallinikos P, Iqbal A, Herbert A, Fadavi H, Efron N, Boulton AJM, Verjee MA. Corneal confocal microscopy detects improvement in corneal nerve morphology with an improvement in risk factors for diabetic neuropathy. Diabet. Med. 2011;28:1261–1267.

Markoulli M, Flanagan J, Tummanapalli SS, Wu J, Willcox M. The impact of diabetes on corneal nerve morphology and ocular surface integrity. Ocul. Surf. 2018;16:45–57.

Bommer C, Sagalova V, Heesemann E, Manne-Goehler J, Atun R, Bärnighausen T, Davies J, Vollmer S. Global Economic Burden of Diabetes in Adults: Projections From 2015 to 2030. Diabetes Care. 2018;41:963–970.

Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union. 2010;53(L276):33-79.

Louhimies S. Directive 86/609/EEC on the protection of animals used for experimental and other scientific purposes. Alternatives to Laboratory Animals. 2002;30(2):217-219.

European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Other Stientific Purposes. Strasburg: Council of Europe. 1986;123:52.

Horalskyi LP, Khomych VT, Kononskyi OI. [Basics of histological technique and morphofunctional research methods in normal and pathological conditions. Tutorial]. Zhytomyr : Polissya. 2015: 286 p.

##submission.downloads##

Опубліковано

2024-07-30

Номер

Розділ

Статті