Ремоделювання кістки нижньої щелепи після трансплантації натурального колагену: гістологічні, імуногістохімічні та ультраструктурні аспекти
DOI:
https://doi.org/10.26641/1997-9665.2023.2.75-84Ключові слова:
нижня щелепа, зубощелепний апарат, регенерація кісткової тканини, октакальційфосфат, хітозан, гістоструктура, імуногістохімія, ультраструктураАнотація
У статті представлені результати дослідження гістологічних, імуногістохімічних та ультраструктурних характеристик кістково-керамічного регенерату після трансплантації натурального колагену в експериментальний дефект нижньої щелепи кролика, оскільки повна та якісна регенерація кісток щелепно-лицевої ділянки, її механізми та динаміка залишаються не до кінця вивченими, потребують уточнення і деталізації. Мета дослідження – визначити динаміку гістологічних, імуногістохімічних та ультраструктурних змін у кістці нижньої щелепи кролика після її травматичного ушкодження із наступним заміщенням дефекту натуральним колагеном. Методи. Досліди виконано на 89 кроликах-самцях віком 6-7 міс, масою 2,5-3,0 кг. 20 тварин становили контрольну групу, 64 – дві експериментальні. Ще 5 інтактних тварин було використано для вивчення нормальної структури кісткової тканини досліджуваної ділянки нижньої щелепи. До контрольної групи увійшли тварини з дефектом кісткової тканини, який загоювався під кров’яним згустком. Першу експериментальну групу складали кролики, у яких кістковий дефект заповнювали натуральним колагеном Collacone («Botiss dental», Germany) (Кол-К). Другу групу складали кролики, у яких кістковий дефект заповнювали натуральним колагеном з одночасним дом’язовим введенням лінкоміцину у дозі 12 мг/кг маси тварини 1 раз на добу впродовж 6 діб (Кол-К-Лінкоміцин). Контроль посттравматичного стану кісткової тканини в ділянці дефекту здійснювали впродовж 84 діб з використанням наступних методик: моделювання кісткового дефекту, світлооптична оцінка гістоструктури декальцинованої кістки, імуногістохімічне визначення експресії маркерів CD34, Calcitonin, Ki-67, трансмісійна електронна мікроскопія. Результати та підсумок. При аугментації експериментального дефекту із застосуванням натурального колагену відбувається інтенсивна стимуляція неоваскулогенезу та утворення численних острівців десмального остеогенезу не лише на периферії, а й у внутрішніх ділянках регенерату, проте відновлення періосту на поверхні імплантованого матеріалу здійснюється стриманими темпами протягом перших трьох тижнів експерименту. В цей період на тлі збереженої запальної інфільтрації остеокондуктивний ефект колагенового імплантату реалізується через утворення розвиненої губчастої структури грубоволокнистих трабекул за рахунок активної міграції остеопрогеніторних клітин, високої мітотичної і синтетичної активності згрупованих остеобластів, хоча ступінь їх дозрівання залишається обмеженим. Внаслідок переважання проліферативної динаміки (за даними вивчення експресії маркерів Ki-67 і CD34) над швидкістю дозрівання остеогенних клітин через 5 тижнів після імплантації кістковий регенерат являє собою щільну сітку грубоволокнистих трабекул з поодинокими локусами ремоделювання без з ознак компактизації. Через 8 тижнів по всьому об’єму репаративного регенерату відбувається активне ремоделювання трабекул з утворенням примітивних кісткових пластинок, які за рахунок прискореного фіброгенезу та обмеженого дозрівання остеоцитів містять численні ультраструктурні ознаки невпорядкованого упакування гетероморфних колагенових волокон і їх пучків у складі кісткового матриксу. Наприкінці експерименту імплантація натурального колагену забезпечує повне відновлення періосту, часткову інтеграцію з материнською кісткою та завершення ремоделювання новоутворених трабекул, проте варіативні за геометрією кісткові пластинки, новоутворені остеони та остеоцитарна лакуно-канальцева система остеорегенерату суттєво відрізняються від інтактної структури. Імплантація натурального колагену із застосуванням лінкоміцину зумовлює ефективну редукцію альтеративних і запальних змін у зоні експериментального дефекту, проте не впливає на темпи відновлення періосту. У перші три тижні після імплантації остеокондуктивний потенціал екзогенного колагену проявляється прискореною васкуляризацією периферичних і глибоких зон регенерату, посиленою міграцією та проліферацією малодиференційованих попередників фібробластів і остеобластів, суттєвим збільшенням кількості і щільності осередків перетинчастого остеогенезу. Впродовж 4-го і 5-го тижнів щільна губчаста гістоархітектура остеорегенерату по всьому об’єму експериментального дефекту, яка побудована з новоутворених грубоволокнистих трабекул і численних дрібних фібротичних ділянок, містить остеобласти з високою секреторною активністю та поодинокі остеоцити з незрілою ультраструктурою. Процеси ремоделювання з утворенням примітивних кісткових пластинок ініціюються на периферії остеорегенерату з боку мінералізованих відновлених трабекул материнської губчастої кістки, які виступають тригером дозрівання остеогенних клітин. У період від 8-го до 12-го тижня після імплантації натурального колагену на тлі активації остеокластів ремоделювання трабекул здійснюється синхронно по всьому об’єму остеорегенерату, що супроводжується посиленням синтезу колагену у складі кісткових пластинок і, навпаки, його редукцією у міжтрабекулярних просторах. Поступова компактизація та мінералізація пластинчастої кісткової тканини призводить до формування примітивної лакуно-канальцевої системи, забезпечує значну, але не повну остеоінтеграцію регенерату, супроводжується обмеженням проліферативної активності диферонів фібробластів і остеобластів, дозріванням більшості остеоцитів і стабілізацією загальної гістоархітектури остеорегенерату.
Посилання
Campana V, Milano G, Pagano E, et al. Bone substitutes in orthopaedic surgery: from basic science to clinical practice. J Mater Sci Mater Med. 2014;25(10):2445-2461. https://doi.org/10.1007/s10856-014-5240-2
Valtanen, R. S., Yang, Y. P., Gurtner, G. C., Maloney, W. J., & Lowenberg, D. W. Synthetic and Bone tissue engineering graft substitutes: What is the future?. Injury. 2021;52(2):S72-S77. https://doi.org/10.1016/j.injury.2020.07.040
Buss DJ, Kröger R, McKee MD, Reznikov N. Hierarchical organization of bone in three dimensions: A twist of twists. J Struct Biol X. 2021;6:100057. doi:10.1016/j.yjsbx.2021.100057.
Li Y, Liu Y, Li R, Bai H, Zhu Z, Zhu L, et al. Collagen-based biomaterials for bone tissue engineering. Mater. Des. 2021;210:110049. doi:10.1016/j.matdes.2021.110049.
Tabrizi R, Khorshidi H, Shahidi S, Gholami M, Kalbasi S, Khayati A. Use of lincomycin-impregnated demineralized freeze-dried bone allograft in the periodontal defect after third molar surgery. J Oral Maxillofac Surg. 2014;72(5):850-857. doi:10.1016/j.joms.2013.11.028
Winkler T, Sass FA, Duda GN, Schmidt-Bleek K. A review of biomaterials in bone defect healing, remaining shortcomings and future opportunities for bone tissue engineering: The unsolved challenge. Bone Joint Res. 2018;7(3):232-243. https://doi.org/10.1302/2046-3758.73.BJR-2017-0270.R1
Everts V, Niehof A, Tigchelaar-Gutter W, Beertsen W. Transmission Electron Microscopy of Bone. Methods Mol Biol. 2019;1914:617-629. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-8997-3_32
Niikura T, Oda T, Jimbo N, et al. Immunohistochemical analysis revealed the expression of bone morphogenetic proteins-4, 6, 7, and 9 in human induced membrane samples treated with the Masquelet technique. J Orthop Surg Res. 2022;17(1):29. https://doi.org/10.1186/s13018-022-02922-y
Mulish M, Welsh U. (Eds.). Romeis Mikroscopiche technic. Heidelberg: Spektrum Akademischer Verlag; 2010. 551 p. https://doi.org/ 10.1007/978-3-8274-2254-5
Suvarna SK, Layton C, Bancroft GD. (Eds.). Bancroft's Theory and Practice of Histological Techniques, 8th Edition. Elsevier; 2019. 558 p. doi: 10.1016/B978-0-7020-6864-5.00008-6
Magaki S, Hojat SA, Wei B, So A, Yong WH. An Introduction to the Performance of Immunohistochemistry. Methods Mol Biol. 2019;1897:289-98. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-8935-5_25
Nguyen T. Immunohistochemistry: A Technical Guide to Current Practices. Cambridge: Cambridge University Press; 2022. 272 p.
Glauert AM. Recent advances of high voltage electron microscopy in biology. J Microsc. 1979;117(1):93-101. https://doi.org/10.1111/j.1365-2818.1979.tb00233.x
Hayat МА. Principles and techniques of electron microscopy: Biological applications [4th ed.]. Cambridge : Cambridge University Press; 2000. 543 p.
European Convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. Strasburg: Council of Europe. 1986;123:52.
Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the Protection of Animals Used for Scientific Purposes. Off J Eur Union. 2010;53(L276):33-79.
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative commons Attribution 4.0 International (CC BY 4.0), яка дозволяє іншим особам вільно поширювати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи в цьому журналі.
Автори, направляючи рукопис до редакції журналу «Morphologia», погоджуються з тим, що редакції передаються права на захист і використання рукопису (переданого до редакції матеріалу, в тому числі таких об'єктів, що охороняються авторським правом, як фотографії автора, малюнки, схеми, таблиці і т.п.), в тому числі на відтворення в пресі і в мережі Інтернет; на поширення; на переклад рукопису на будь-які мови; експорту та імпорту примірників журналу зі статтею Авторів з метою поширення, доведення до загального відома. Зазначені вище права Автори передають Редакції без обмеження терміну їх дії і на території всіх країн світу без обмеження.
Автори гарантують, що вони мають виняткові права на використання матеріалів, переданих до редакції. Редактори не несуть відповідальності перед третіми особами за порушення гарантії, надані авторами. Розглянуті права передаються до редакції з моменту підписання поточної публікації для публікації. Відтворення матеріалів, опублікованих в журналі іншими особами та юридичними особами, можливе лише за згодою редакції, з обов'язковим зазначенням повної бібліографічного посилання первинної публікації. Автори залишають за собою право використовувати опублікований матеріал, його фрагменти і частини для навчальних матеріалів, усні презентації, підготовку дисертації дисертації з обов'язковою бібліографічною посиланням на оригінальну роботу. Електронна копія опублікованій статті, що завантажується з офіційного веб-сайту журналу в форматі .pdf, може бути розміщена авторами на офіційному веб-сайті їх установ, будь-яких інших офіційних ресурсах з відкритим доступом.