Зміни структурної організації загруднинної залози при позаклітинному зневодненні

Автор(и)

  • O.O. Prykhodko Сумський державний університет, Суми, Україна
  • E.O. Prykhodko Сумський державний університет, Суми, Україна https://orcid.org/0000-0002-3056-091X

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2023.2.43-51

Ключові слова:

загруднинна залоза, зневоднення, тимоцити, епітеліоретикулоцити, ендотеліоцити.

Анотація

Актуальність. Функціональний стан загруднинної залози впливає на здатність організму до захисту від дії чужорідних антигенів та процес адаптації до несприятливих умов. Мета дослідження – вивчити зміни структурної організації загруднинної залози при позакліинному зневодненні. Методи. Використано гістологічний, імуногістохімічний та електронно-мікроскопічний методи дослідження. Дослідження проведено на 30 щурах-самцях зрілого віку. Досліджувані тварини були розділені на дві групи. Експериментальна група тварини (15 тварин) піддавались позаклітинній дегідратації, їх харчовий раціон включав виварену їжу та бідистильовану воду впродовж 60 днів. Окрім того впродовж експерименту тваринам внутрішньоочеревинно вводили препарат Фуросемід, його доза становила 0,0003г. Результати. Було досліджено, що через 60 днів від початку експерименту у щурів з середнім ступенем позаклітинної дегідратації в більшій частині спостережень відзначається акцидентальна трансформація ІІІ-IV фази. Активним є процес загибелі лімфоцитів, що веде до спустошення мозкового компартмента і втрати інверсії шарів. Зростає кількість плазматичних клітин, а проліферуючих Кі-67+ клітин зменшується. Міжклітинний простір містить ділянки клітинного детриту у вигляді клітинних мембран, органел та хроматину. Частина всіх видів клітин характеризується тотальним руйнуванням мембран, ядра, органел цитоплазми, евакуацією цитоплазматичного матеріалу в міжклітинний простір і, зрештою, формуванням «порожнин» – кістоподібних вакуолеподібних структур. Всі судини зазнають змін в даному терміні експерименту. Характерним є повнокрів’я судин та венозний стаз. Не рідким явищем є вихід формених елементів крові у паренхіму органа. Підсумок. Отже, через 60 діб позаклітинної дегідратації розвиваються ознаки акцидентальної трансформації ІІІ-IV фази.

Посилання

Adane F, Asres K, Ergete W, Woldekidan S, Seyoum G. The Developmental Toxicity of Thymus schimperi Essential Oil in Rat Embryos and Fetuses. Journal of Toxicology. 2022;2022:4091839. doi:10.1155/2022/4091839.

Bhalla P, Su DM, Oers NSC. Thymus Functionality Needs More Than a Few TECs. Frontiers in Immunology. 2022;13:864777. doi: 10.3389/fimmu.2022.864777

Feng P, Wu J, Ren Y, Zhang L, Cao J, Yang L. Early pregnancy regulates the expression of prolactin and its receptor in the thymus, the liver, the spleen and lymph nodes in sheep. Domestic Animal Endocrinology. 2022;81:106731.

Martinez-Ruiz GU, Morales-Sanchez A, Bhandoola A. Transcriptional and epigenetic regulation in thymic epithelial cells. Immunological Reviews. 2022;305:43-58.

Shyian D, Avilova O, Ladnaya I. Organometric changes of rats thymus after xenobiotics exposure. Arch Balk Med Union. 2019;54(3):422-30. https://doi.org/10.31688/ABMU.2019.54.3.04

Avilova O, Sheyan D, Marakushin D, Erokhina V, Gargin V. Ultrastructural changes in the organs of the immune system under the influence of xenobiotics. Georgian Medical News. 2018;(6):132-7.

Mokhtar YOM, Mokhemer SA, Mohammed HH, El-Tahawy NFG. Impact of Gestational Diabetes on the Thymus Gland of Rat’s Offspring and the Possible Ameliorating Effect of Thymoquinone: Biochemical, Histological, and Immunohistochemical Study. Microscopy and Microanalysis. 2023;29(2):698-712. https://doi.org/10.1093/micmic/ozad007.

Shrief AI, Hamed WHE, Mazroa SA, Moustafa AM. Growth hormone enhances the CD34+ stem cells repopulation of the male albino rat thymus gland in cyclophosphamide induced injury: immunohistochemical and electron microscopic study. Ultrastructural Pathology. 2023;47(2):31-48. https://doi.org/10.1080/01913123.2023.2170510.

Cheuvront SN, Kenefick RW, Charkoudian N, Sawka MN. Physiologic basis for understanding quantitative dehydration assessment. The American Journal of Clinical Nutrition. 2013;97(3):455-62. https://doi.org/10.3945/ajcn.112.044172.

Bailey TW, do Nascimento NC, Dos Santos AP, Sivasankar MP, Cox A. Comparative proteomic changes in rabbit vocal folds undergoing systemic dehydration and systemic rehydration. J Proteomics. 2023;270:104734. doi: 10.1016/j.jprot.2022.104734.

Perry RJ, Rabin-Court A, Song JD, Cardone RL, Wang Y, Kibbey RG, et al. Dehydration and insulinopenia are necessary and sufficient for euglycemic ketoacidosis in SGLT2 inhibitor-treated rats. Nat Commun, 2019, 10:548. https://doi.org/10.1038/s41467-019-08466-w.

Santollo J, Myers KE, Rainer IL, Edwards AA. Gonadal hormones in female rats protect against dehydration-induced memory impairments in the novel object recognition paradigm. Hormones and Behavior. 2019;114:104547. https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2019.06.011

Vash IYu. Morphological Changes of the Thymus of the Juvenile White Rats Exposed to the Inhalation of Formaldehyde. Journal of Anatomy and Histopathology. 2020;9(1):16-23. doi:10.18499/2225-7357-2020-9-1-16-23

Geng Y, Zhu L, Liu F, Zhu X, Niu J, Li G. Effect of dehydration heat exposure on thoracic aorta reactivity in rats. Biomed Rep. 2016;5:613-7. https://doi.org/10.3892/br.2016.760

Davydova L. The morphological features of rat’s tongue at the hypotonic dehydration of the organism during the experiment. Bukovynskiy Medical Journal. 2017;21,2(82):39-43.

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-04-19

Номер

Розділ

Статті