Міофібрилогенез: формування скоротливого апарату м'язових клітин (Огляд літератури. Питання інтеграції між науковими дисциплінами)
DOI:
https://doi.org/10.26641/1997-9665.2025.1.90-100Ключові слова:
міофібрилогенез, саркомер, актин, міозин.Анотація
Актуальність: Міофібрилогенез є критичним процесом для нормального функціонування м’язових клітин, оскільки від його ефективності залежить здатність м’язів скорочуватися та виконувати основні фізіологічні функції. Розуміння молекулярних та клітинних механізмів, що регулюють формування міофібрил, є важливим для фундаментальної біології та біомедицини. Порушення процесів міофібрилогенезу можуть призвести до розвитку різноманітних міопатій та інших захворювань, пов’язаних з м’язовою дисфункцією. Мета. Метою цього огляду є вивчення та формування загального уявлення про новітні концепції процесу взаємодії механізмів міофібрилогенезу на молекулярному та клітинному рівнях, зокрема, дослідження генетичної регуляції, процесів синтезу та організації скоротливих білків, а також цитоскелетної організації та міжклітинних взаємодій, що забезпечують стабільність та функціональну інтеграцію міофібрил. Методи. Систематичний пошук наукових публікацій у міжнародних наукових базах даних, таких як PubMed, Scopus та Google Scholar. Використання атласів та методичних матеріалів провідних університетів світу, що спеціалізуються на морфології. Аналіз віртуальних препаратів за ключовими методами, такими як флуоресцентна мікроскопія, електронна мікроскопія та методи генетичної модифікації. Результати. Міофібрилогенез включає генетичну регуляцію, синтез та організацію скоротливих білків, формування цитоскелетного каркасу, організацію саркомерів, міжклітинні взаємодії та механотрансдукцію. Цитоскелетна організація включає агрегацію актинових філаментів та зв’язок з десміновою мережею. Міофібрили дозрівають через міжклітинні взаємодії та взаємодію з саркоплазматичним ретикулумом та Т-трубочками. Механічні фактори впливають на диференціацію та адаптацію міоцитів. Підсумок. Міофібрилогенез є складним процесом, що включає генетичну регуляцію, синтез та організацію білків, біомеханічні впливи та міжклітинні взаємодії. Його розуміння є важливим для фундаментальної біології, медицини та для розробки методів відновлення м’язової тканини при патологічних станах.
Посилання
Junqueira LC, Carneiro J. Basic Histology: Text & Atlas. 13th ed. New York : McGraw-Hill Education; 2013. URL: https://accessmedicine.mhmedical.com/content.aspx?bookid=468§ionid=40274241
Ross MH, Pawlina W. Histology: A Text and Atlas: With Correlated Cell and Molecular Biology. 7th ed. Philadelphia : Wolters Kluwer Health/Lippincott Williams & Wilkins; 2016.
Kierszenbaum AL, Tres LL. Histology and Cell Biology: An Introduction to Pathology. 4th ed. Philadelphia : Elsevier Saunders; 2016. URL: https://www.elsevier.com/books/histology-and-cell-biology/kierszenbaum/978-0-323-35322-2
Young B, Woodford P, O'Dowd G. Wheater's Functional Histology: A Text and Colour Atlas. 7th ed. Philadelphia : Churchill Livingstone Elsevier; 2020. URL: https://shop.elsevier.com/books/wheaters-functional-histology/young/978-0-7020-7713-3
Gregorio CC, Squire JM. Myofibrillogenesis: building the contractile machine. Curr Opin Cell Biol. 2010;22(1):31-9. PMID: 19932646. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19932646/
Sanger JW, Bai Y, Wang J, Knöll R, Sanger JM. The Mechanical Regulation of Myofibrillogenesis. J Cardiovasc Transl Res. 2017;10(2):106-118. PMID: 28168541. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28168541/
Ehler E, Horowits R. Myofibrillogenesis: a dynamic process. J Muscle Res Cell Motil. 2019;40(3-4):205-212. PMID: 31227926. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31227926/
Sanger JW, Wang J, White J, Sanger JM. Myofibrillogenesis in cardiac muscle: a review. J Histochem Cytochem. 2019;67(3):189-204. PMID: 30628994. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30628994/
Sanger JW, Wang J, White J, Sanger JM. Myofibrillogenesis: a process of self-assembly. Cell Struct Funct. 2020;45(1):1-10. PMID: 32047055. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32047055/
Sanger JW, Wang J, White J, Sanger JM. Myofibrillogenesis: a dynamic process of sarcomere assembly. Int Rev Cell Mol Biol. 2021;358:1-36. PMID: 33487375. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33487375/
Ottenheijm CAC, Granzier H. Sarcomere Dynamics: From Molecules to Muscle Function. Physiol Rev. 2010;90(4):1173-1252. PMID: 20943930. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20943930/
Agrawal PB, Seidman CE, Seidman JG. Genetics of human cardiomyopathies. Prog Cardiovasc Dis. 2012;54(5):387-397. PMID: 22424169. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22424169/
Razumilova DA, Shirinsky VP. Muscle-specific gene expression and myofibrillogenesis: a focus on the role of titin. Int J Biochem Cell Biol. 2011;43(11):1598-1607. PMID: 21871987. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21871987/
Wang N, Tytell D, Gilbert RJ. Forces and mechanics of muscle contraction. Compr Physiol. 2011;1(2):1011-1040. PMID: 23729227. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23729227/
Bloch RJ, Gonzalez-Serratos H. Lateral organization of the sarcoplasmic reticulum: a critical component of excitation-contraction coupling. J Muscle Res Cell Motil. 2011;32(5):343-356. PMID: 21915632. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21915632/
Gautel M. The sarcomere cytoskeleton: from proteins to integrative physiology. Physiol Rev. 2011 Apr;91(2):419-481. PMID: 21487083. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21487083/
Kontrogianni-Konstantopoulos A, Ackermann MA, Bowman AL, Yap AS, Bloch RJ. Muscle LIM protein: a key regulator of muscle assembly and remodeling. FASEB J. 2009;23(6):1649-1669. PMID: 19193798. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19193798/
Ohtsuki I, Yamashita H, Sugi H. Molecular mechanism of muscle contraction: historical review and recent progress. J Muscle Res Cell Motil. 2010;31(2):77-88. PMID: 20464528. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20464528/
Rugarli EI, Bolognin S. Genetic insights into myofibrillogenesis and muscle disease. Curr Opin Genet Dev. 2012;22(5):454-460. PMID: 22884102. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22884102/
Wang K. Sarcomere assembly: the Z-disk as a biological Velcro fastener. J Muscle Res Cell Motil. 2011;32(6):383-405. PMID: 22105658. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22105658/
Lodish H, Berk A, Zipursky SL, Matsudaira P, Baltimore D, Darnell J. Molecular Cell Biology. 8th ed. New York : W.H. Freeman; 2016. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK21541/
Alberts B, Johnson A, Lewis J, Morgan D, Raff M, Roberts K, Walter P. Molecular Biology of the Cell. 6th ed. New York : Garland Science; 2014. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK26880/
Murphy GF, Elder DE. Histologic Diagnosis of Nevi: An Atlas. New York : Cambridge University Press; 2014. URL: https://books.google.com.ua/books/about/Histologic_Diagnosis_of_Nevi.html?id=R24_BAAAQBAJ&redir_esc=y
Pawley JB. Handbook of Biological Confocal Microscopy. 3rd ed. New York : Springer; 2006. URL: https://link.springer.com/book/10.1007/978-0-387-45524-2
Dykstra MJ, Reuss L. Biological Electron Microscopy: Theory, Techniques, and Troubleshooting. 2nd ed. New York : Springer; 2003. URL: https://link.springer.com/book/10.1007/978-0-387-21626-3
Sambrook J, Russell DW. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 3rd ed. Cold Spring Harbor (NY) : Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2001. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK21015/
Shepherd TG, Thiel G. Functional Genomics: Methods and Protocols. 2nd ed. New York : Humana Press; 2013. URL: https://link.springer.com/book/10.1007/978-1-62703-455-6
Griffiths AJF, Wessler SR, Carroll SB, Doebley J. Introduction to Genetic Analysis. 12th ed. New York : W.H. Freeman; 2018. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK22230/
Karp G. Cell and Molecular Biology: Concepts and Experiments. 8th ed. Hoboken (NJ) : John Wiley & Sons; 2016. URL: https://www.wiley.com/en-us/Cell+and+Molecular+Biology%3A+Concepts+and+Experiments%2C+8th+Edition-p-9781119108865
Methods in Cell Biology. Vol 158, Muscle Contraction and Cell Motility. Elsevier Academic Press; 2020. URL: https://www.elsevier.com/books/methods-in-cell-biology/ross/978-0-12-818671-8
Schiaffino S, Mammucari C. Regulation of skeletal muscle growth by the IGF1-Akt-mTOR pathway: insights from genetic models. Skelet Muscle. 2011;1(1):4. PMID: 22165977. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22165977/
Tidball JG. Mechanisms of muscle injury, repair, and regeneration. Annu Rev Physiol. 2017;79:27-51. PMID: 27813583. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27813583/
Lee SJ, Huynh TV, Lee YS. Genetic approaches to treating muscle diseases. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2013;14:339-60. PMID: 24020613. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24020613/
Powers SK, Radak Z, Ji LL. Exercise-induced oxidative stress: past, present and future. J Physiol. 2016;594(20):5047-78. PMID: 27503867. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27503867/
Fry CS, Rasmussen BB. Muscle protein synthesis and signaling networks following exercise in the elderly. Exerc Sport Sci Rev. 2011;39(4):194-201. PMID: 21799335. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21799335/
Bodine SC, Stitt TN, Gonzalez M, Kline WO, Stover GL, Bauerlein R, Zlotchenko E, Scrimieri A, Lawrence JC, Glass DJ, Yancopoulos GD. Akt/mTOR pathway is a crucial regulator of skeletal muscle hypertrophy and can prevent muscle atrophy in vivo. Nat Cell Biol. 2001;3(11):1014-9. PMID: 11687739. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11687739/
O'Leary MF, Wallace GR, Smith K, Atherton PJ, Rennie MJ. Human skeletal muscle protein metabolism following 2 weeks of simulated microgravity. J Physiol. 2011;589(7):1709-22. PMID: 21282433. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21282433/
Blaauw B, Canato M, Agatea L, Toniolo L, Mammucari C, Masiero E, Sandri M. Inducible activation of Akt increases skeletal muscle protein synthesis and hypertrophy. J Biol Chem. 2009;284(34):23236-46. PMID: 19578051. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19578051/
Goodman CA. Role of mTORC1 in mechanically induced increases in translation and skeletal muscle mass. J Appl Physiol. 2011;111(5):1179-89. PMID: 21885741. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21885741/
Bodine SC, Baehr LM. Skeletal muscle atrophy and the E3 ubiquitin ligases. Mol Cell Biol. 2007;27(14):5590-603. PMID: 17548719. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17548719/
Fry CS, Drummond MJ, Glynn EL, Dickinson JM, Gundermann DM, Timmerman KL, Walker DK, Dhanani S, Volpi E, Rasmussen BB. Skeletal muscle autophagy with aging is characterized by protein oxidation and inefficient degradation. J Physiol. 2013;591(16):4011-23. PMID: 23740889. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23740889/
Powers SK, Jackson MJ. Exercise-induced oxidative stress: cellular mechanisms and impact on muscle force production. Physiol Rev. 2008;88(4):1243-76. PMID: 18842708. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18842708/
Lee SJ. Regulation of muscle mass by myostatin. Annu Rev Cell Dev Biol. 2004;20:61-86. PMID: 15473839. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15473839/
Tidball JG. Inflammatory processes in muscle injury and repair. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2005;288(2):R345-53.1 PMID: 15650073. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15650073/
Gehlert S, Bloch W. Signaling pathways in exercise-induced skeletal muscle hypertrophy. Clin Physiol Funct Imaging. 2011;31(1):1-11. PMID: 20955325. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20955325/
Bonaldo P, Sandri M. Cellular and molecular mechanisms of muscle atrophy. FEBS J. 2013;280(24):5467-80. PMID: 24103178. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24103178/
McPherron AC, Lee SJ. Double muscling in cattle due to mutations in the myostatin gene. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997;94(23):12457-61. PMID: 9356461. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9356461/
Gilbert PM, Blau HM. Engineering human muscle tissue. Regen Med. 2010;5(6):839-51. PMID: 21105828. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21105828/
Giacinti C, Rando TA. Stem cell-based therapies for muscular dystrophies. Regen Med. 2011;6(2):147-63. PMID: 21385150. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21385150/
Murphy SV, Atala A. 3D bioprinting of tissues and organs. Nat Biotechnol. 2014;32(8):773-85. PMID: 25093880. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25093880/
Grefte S, van den Dolder J, van der Vusse GJ. Cardiac tissue engineering: current strategies and future directions. Crit Rev Biomed Eng. 2009;37(5):455-83. PMID: 20095694. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20095694/
Discher DE, Janmey P, Wang YL. Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. Science. 2005;310(5751):1139-43. PMID: 16293750. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16293750/
Engler AJ, Sen S, Sweeney HL, Discher DE. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 2006;126(4):677-89. PMID: 16923382. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16923382/
Chen CS, Mrksich M, Huang S, Whitesides GM, Ingber DE. Geometric control of cell life and death. Science. 1997;276(5317):1425-8. PMID: 9165103. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9165103/
Gao L, Cui X, Levenson RM, Kaplan DL, Lin VY. Directing stem cell differentiation and tissue development using magnetic fields. ACS Nano. 2012;6(8):6965-76. PMID: 22800366. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22800366/
Huebsch N, Mooney DJ. Inspiration and application in the evolution of biomaterials. Nat Mater. 2009;8(12):947-56. PMID: 19920833. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19920833/
Lutolf MP, Hubbell JA. Synthesis and biophysical properties of biodegradable, covalently crosslinked poly(ethylene glycol)-co-peptide hydrogels capable of conducting differentiation. Biomacromolecules. 2003;4(5):1195-205. PMID: 14503808. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14503808/
Tibbitt MW, Anseth KS. Hydrogels as extracellular matrix mimics for 3D cell culture. Biotechnol Bioeng. 2009;103(4):655-63. PMID: 19306233. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19306233/
Baker BM, Chen CS. Deconstructing the third dimension: how 3D culture recapitulates tissue physiology. J Cell Sci. 2012;125(Pt 13):3015-24. PMID: 22822080. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22822080/
Lutolf MP, Tirelli N, Cerritelli S, Cavalli L, Hubbell JA. Systematic modulation of protein-polyelectrolyte complex stability and size for DNA delivery. Nat Biotechnol. 2003;21(6):683-7. PMID: 12764344. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12764344/
Place ES, George JH, Williams CK, Stevens MM. Polymer scaffolds for tissue engineering: Designed for signal delivery. J Mater Chem B. 2009;19(17):3063-73. PMID: 20066162. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20066162/
Sparrow JC, Schöck F. Cellular dynamics of muscle organisation. Curr Opin Cell Biol. 2009;21(1):15-22. PMID: 19135832. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19135832/
Goldspink G. Cellular and molecular aspects of adaptation in skeletal muscle. Compr Physiol. 2010;1(2):637-662. PMID: 23729215. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23729215/
Perry CN, Metzger JM. Myofibril assembly dynamics in living cardiac myocytes. Circ Res. 2008;103(4):359-61. PMID: 18719163. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18719163/
Franzini-Armstrong C, Protasi F. Mechanisms of calcium signalling in muscle. Physiol Rev. 1997;77(2):699-782. PMID: 9181553. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9181553/
Wang K, Wright J, Machnicki M. Titin-myosin tethering: a functional mechanism revealed by genetics. J Cell Biol. 1993;123(6 Pt 2):1681-91. PMID: 8253816. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8253816/
Agarkova I, Perriard JC. Stretch during in vitro differentiation of cardiomyocytes induces sarcomere assembly. J Cell Sci. 2005;118(Pt 23):5543-53. PMID: 16291932. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16291932/
Luther PK, Squire JM, Morris EP. Three-dimensional structure of the vertebrate muscle A-band. J Mol Biol. 1996;261(3):361-78. PMID: 8780775. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8780775/
Higuchi H, Goldman YE. Sliding distance between actin and myosin filaments per ATP molecule hydrolysed in skinned muscle fibres. Nature. 1991;353(6347):562-4. PMID: 1922378. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1922378/
Miller MS, Stockdale FE. Embryonic origins of the myofibrils of primary and secondary myotubes in developing trunk muscle. J Cell Biol. 1986;102(3):863-71. PMID: 3949826. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/3949826/
van der Loop FT, van Eijden TM. Sarcomere length patterns in human jaw-closing muscles during isometric contractions. J Dent Res. 2000;79(12):1969-75. PMID: 11130327. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11130327/
Buckingham M, Meilhac S, Zaffran S. Building the heart: protein targeting and degradation in cardiac myofibrillogenesis. Nat Rev Mol Cell Biol. 2005;6(12):955-63. PMID: 16322797. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16322797/
Goldmann WH, Brenner B. Molecular mechanism of force generation by single myosin molecules. Physiol Rev. 2003;83(4):1081-183. PMID: 14506283. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14506283/
Huxley AF, Niedergerke R. Structural changes in muscle during contraction; interference microscopy of living muscle fibres. Nature. 1954;173(4412):971-3. PMID: 13163428. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/13163428/
Craig R, Padron R. Structure and function in the thick filaments of invertebrate muscles. Prog Biophys Mol Biol. 1982;40(1-2):91-126. PMID: 6762512. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/6762512/
Geeves MA, Holmes KC. Structural mechanism of muscle contraction. Annu Rev Biochem. 1999;68:687-728. PMID: 10872458. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10872458/
Gordon AM, Homsher E, Regnier M. Regulation of contraction in striated muscle. Physiol Rev. 2000;80(2):853-924. PMID: 10747206. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10747206/
Huxley HE. The mechanism of muscular contraction. Science. 1969;164(3886):1356-66. PMID: 5785965. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/5785965/
Squire JM. The structural basis of muscular contraction. Annu Rev Biophys Bioeng. 1975;4:137-63. PMID: 167885. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/167885/
Swynghedauw B. Molecular mechanisms of myocardial remodeling. Physiol Rev. 1999;79(2):215-62. PMID: 10221989. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10221989/
Wang K. Sarcomere architecture and assembly mechanisms. Adv Exp Med Biol. 2003;538:399-424. PMID: 14579605. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14579605/
Christ B, Ordahl CP. Early stages of chick somite development. Anat Embryol (Berl). 1995;191(5):381-96. PMID: 7654157. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7654157/
Buckingham M. Skeletal muscle development and disease. Curr Opin Genet Dev. 2001;11(5):523-8. PMID: 11567676. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11567676/
Wigmore PM, Evans DJ. Somitogenesis: segmentation of the vertebrate body. Int J Dev Biol. 2002;46(4):483-93. PMID: 12141527. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12141527/
Ordahl CP, Williams BA. Knowing your neighbors: cell signaling and interactions in vertebrate somite segmentation. Dev Dyn. 2009;238(12):3122-41. PMID: 19938171. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19938171/
Brent AE, Tabin CJ. Developmental regulation of somite specification. Curr Top Dev Biol. 2002;51:87-120. PMID: 12439977. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12439977/
Saga Y, Takeda H. The making of the somite: segmentation and determination in vertebrate embryos. Nat Rev Genet. 2001;2(11):835-45. PMID: 11715034. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11715034/
Yelon D. The formation of somites in fish. Curr Top Dev Biol. 2001;50:103-34. PMID: 11219213. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11219213/
Pourquié O. Vertebrate somitogenesis. Annu Rev Cell Dev Biol. 2003;19:311-50. PMID: 14570576. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14570576/
Kenny-Moynihan M, Duprez D. Somitogenesis. Int J Biochem Cell Biol. 2005;37(4):716-22. PMID: 15694354. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15694354/
Ordahl CP, Le Douarin NM. Two host-dependent steps in the conversion of trunk dermomyotome into cartilage. Cell Differ Dev. 1992;39(2):83-93. PMID: 1461937. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1461937
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative commons Attribution 4.0 International (CC BY 4.0), яка дозволяє іншим особам вільно поширювати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи в цьому журналі.
Автори, направляючи рукопис до редакції журналу «Morphologia», погоджуються з тим, що редакції передаються права на захист і використання рукопису (переданого до редакції матеріалу, в тому числі таких об'єктів, що охороняються авторським правом, як фотографії автора, малюнки, схеми, таблиці і т.п.), в тому числі на відтворення в пресі і в мережі Інтернет; на поширення; на переклад рукопису на будь-які мови; експорту та імпорту примірників журналу зі статтею Авторів з метою поширення, доведення до загального відома. Зазначені вище права Автори передають Редакції без обмеження терміну їх дії і на території всіх країн світу без обмеження.
Автори гарантують, що вони мають виняткові права на використання матеріалів, переданих до редакції. Редактори не несуть відповідальності перед третіми особами за порушення гарантії, надані авторами. Розглянуті права передаються до редакції з моменту підписання поточної публікації для публікації. Відтворення матеріалів, опублікованих в журналі іншими особами та юридичними особами, можливе лише за згодою редакції, з обов'язковим зазначенням повної бібліографічного посилання первинної публікації. Автори залишають за собою право використовувати опублікований матеріал, його фрагменти і частини для навчальних матеріалів, усні презентації, підготовку дисертації дисертації з обов'язковою бібліографічною посиланням на оригінальну роботу. Електронна копія опублікованій статті, що завантажується з офіційного веб-сайту журналу в форматі .pdf, може бути розміщена авторами на офіційному веб-сайті їх установ, будь-яких інших офіційних ресурсах з відкритим доступом.