Морфологічні зміни тканинних компонентів передньої черевної стінки після проведення експери-ментальної пластики великого вентрального дефекту

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2025.1.23-30

Ключові слова:

експериментальна вентральна грижа, алопластика, регенерація тканин, мікроциркуляція, морфометрія.

Анотація

Актуальність. У цей час триває активний пошук способів підвищення ефективності алопластики вентральних гриж в експериментальному і в клінічному напрямках, проте залишаються недостатньо вивченими структурно-функціональні зміни рубцевої тканини у процесі її реорганізації, а також стан м’язово-апоневротичних, мікросудинних і сполучнотканинних компонентів у післяопераційному періоді. Суттєву роль для розуміння структурно-функціонального стану тканини має аналіз взаємовідношень сполучної тканини з елементами гемомікроциркуляторного русла, а також кількісна оцінка реорганізації мікросудинного русла з урахуванням динаміки перебудов м’язово-апоневротичних структур у складі передньої черевної стінки. Мета. В основу роботи покладена кількісна морфологічна оцінка перебудов мікросудинного, сполучнотканинного та м’язово-апоневротичного компо­нентів у складі передньої черевної стінки щурів після проведення алопластики значного за розмірами вентрального дефекту за допомогою поліпропіленової монофіламентної сітки "Prolene". Методи. Гістологічне дослідження проводили через 3 доби, 10 діб, 1 місяць, 3 місяці та 1 рік після імплантації поліпропіленового протеза. 68 щурів розподіляли на 3 експериментальні групи: 1) пластика з пошаровим ушиванням дефекту шляхом натягнення і зближення країв рани; 2) пластика з фіксацією поліпропіленової монофіламентної сітки "Prolene" з подальшим натягненням й співставленням країв дефекту; 3) пластика з фіксацією сітки без наступного натягнення й співставлення країв дефекту. За допомогою програмного пакету ImageJ 1,47v визначали відносні об'єми м'язових волокон, гемокапілярів м’язів і рубцевої тканини, сполучнотканинної строми м’язів, нейтрофільних гранулоцитів, фібробластів і колагенових волокон рубцевої тканини. Результати та підсумок. У дослідженні з’ясовано, що механічна напруга м’язово-апоневротичного шару черевної стінки при натягуванні і співставленні країв експериментального дефекту є суттєвим фактором, який обумовлює збільшення термінів перебігу рубцювання, а також викликає стабільні дегенеративні процеси м’язово-апоневротичних структур. Це супроводжується дефіцитом мікроциркуляторного забезпечення структур, дистрофічними явищами у складі м’язових волокон, гіперплазією сполучнотканинних компонентів м’язово-апоневротичного шару передньої черевної стінки з найбільшою виразністю патологічних змін від 10-ї доби до кінця 3-го місяця після проведення алопластики. Застосування поліпропіленового протезу для пластики без механічної напруги м’язово-апоневротичних структур дозволяє значно оптимізувати перебіг відновно-пристосувальних процесів протягом перших 3 місяців післяопераційного періоду.

Посилання

Guillaume O, Teuschl AH, Gruber-Blum S, Fortelny RH, Redl H, Petter-Puchner A. Emerging Trends in Abdominal Wall Reinforcement: Bringing Bio-Functionality to Meshes. Adv. Healthc. Mater. 2015;4:1763–89. doi: 10.1002/adhm.201500201

Köckerling F, Koch A, Lorenz R. Groin Hernias in Women – A Review of the Literature. Front. Surg. 2019;6:4. doi: 10.3389/fsurg.2019.00004

Ibrahim SR, Ward PJ. Tissue adhesives for hernia mesh fixation: A literature review. Cureus. 2020;12:e10494. doi: 10.7759/cureus.10494

Żywicka B, Struszczyk MH, Paluch D, Kostanek K, Krucińska I, Kowalski K, Kopias K, Rybak Z, Szymonowicz M, Gutowska A, Kubiak P. Design of New Concept of Knitted Hernia Implant. Materials (Basel). 2022;15(7):2671. doi: 10.3390/ma15072671.

HerniaSurge Group International guidelines for groin hernia management. Hernia. 2018;22:1-165. doi: 10.1007/s10029-017-1668-x

Tian J, Song X, Wang Y, Cheng M, Lu S, Xu W, Gao G, Sun L, Tang Z, Wang M, Zhang X. Regulatory perspectives of combination products. Bioact Mater. 2021;10:492-503. doi: 10.1016/j.bioactmat.2021.09.002

Dhandapani V, Ringuette V, Desrochers M, Sirois M, Vermette P. Composition, host responses and clinical applications of bioadhesives. J. Biomed. Mater. Res. 2022;110:2779–2797. doi: 10.1002/jbm.b.35113

Hachim D, LoPresti ST, Yates CC, Brown BN. Shifts in macrophage phenotype at the bio-material interface via IL-4 eluting coatings are asso-ciated with improved implant integration. Bio-materials. 2017;112:95–107. doi: 10.1016/j.biomaterials.2016.10.019

Heymann F, von Trotha KT, Preisinger C, Lynen-Jansen P, Roeth AA, Geiger M, Geisler LJ, Frank AK, Conze J, Luedde T, et al. Polypropylene mesh implantation for hernia repair causes myeloid cell-driven persistent inflammation. JCI Insight. 2019;4:e123862. doi: 10.1172/jci.insight.123862

Lu X, Khanna A, Luzinov I, Nagatomi J, Harman M. Surface modification of polypropylene surgical meshes for improving adhesion with polox-amine hydrogel adhesive. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2019;107(4):1047-55. doi: 10.1002/jbm.b.34197

Vogels RRM, Kaufmann R, van den Hil LCL, van Steensel S, Schreinemacher MHF, Lange JF, Bouvy ND. Critical overview of all available animal models for abdominal wall hernia research. Hernia. 2017;21:667–75. doi: 10.1007/s10029-017-1605-z

Gil D., Rex J., Cobb W., Reukov V., Verte-gel A. Anti-inflammatory coatings of hernia repair meshes: A pilot study. J. Biomed. Mater. Res. Part B. 2018;106B:589–97. doi: 10.1002/jbm.b.33834

Harman M, Champaigne K, Cobb W, Lu X, Chawla V, Wei L, Luzinov I, Mefford OT, Nagatomi J. A Novel Bio-Adhesive Mesh System for Medical Implant Applications: In Vivo Assessment in a Rabbit Model. Gels. 2023;9(5):372. doi: 10.3390/gels9050372

Liu W, Xie Y, Zheng Y, He W, Qiao K, Meng H. Regulatory science for hernia mesh: Cur-rent status and future perspectives. Bioact Mater. 2020;6(2):420-32. doi: 10.1016/j.bioactmat.2020.08.021

Gao Y, Han X, Chen J, Pan Y, Yang M, Lu L, Yang J, Suo Z, Lu T. Hydrogel-mesh composite for wound closure. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2021;118:e2103457118. doi: 10.1073/pnas.2103457118

Lanzalaco S, Weis C, Traeger KA, Turon P, Alemán C, Armelin E. Mechanical Properties of Smart Polypropylene Meshes: Effects of Mesh Ar-chitecture, Plasma Treatment, Thermosensitive Coating, and Sterilization Process. ACS Biomater Sci Eng. 2023;9(6):3699-711. doi: 10.1021/acsbiomaterials.3c00311

Mulish M, Welsh U. (Eds.). Romeis Mikro-scopiche technic. Heidelberg: Spektrum Akad-emischer Verlag; 2010. 551 p. https://doi.org/ 10.1007/978-3-8274-2254-5

Suvarna SK, Layton C, Bancroft GD. (Eds.). Bancroft's Theory and Practice of Histologi-cal Techniques, 8th Edition. Elsevier; 2019. 558 p. https:// doi.org/10.1016/B978-0-7020-6864-5.00008-6

Collins TJ. ImageJ for microscopy. Bio-Techniques. 2007;43:25-30.

Poslavska OV. [Determination of linear di-mensions and square surfaces areas of morphologi-cal objects on micrographs using ImageJ software]. Morphologia. 2016;10(3):377-81. Ukrainian.

Méndez-Vilas A, Rigoglio NN, Mendes Sil-va MV. Current microscopy contributions to ad-vances in science and technology. Badajoz : For-matex, 2012. 1523 p.

European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Oth-er Stientific Purposes. Strasburg: Council of Europe. 1986;123:52.

Directive 2010/63/EU of the European Par-liament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific pur-poses. Official Journal of the European Union. 2010;53(L276):33-79.

Hruzieva TS, Lekhan VM, Ohniev VA, Ha-liienko LI, Kriachkova LV, Palamar BI, et al. [Bio-statistics]. Vinnytsia : New Book; 2020. 384 p. Ukrainian.

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-04-08

Номер

Розділ

Статті