Cполучнотканинні клітини шкіри: гетерогенітет фібробластів і загальні властивості їх субпопуляцій

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2024.1.89-94

Ключові слова:

шкіра, фібробласти, клітинні субпопуляції, гістофізіологічні властивості.

Анотація

Проведення експериментальних і клінічних досліджень потребує інтеграції відомостей про морфологічні та функціональні особливості органів і тканинних структур. Одним з прикладів такої інтеграції є аналіз гістофізіології шкіри, зокрема дермальних фібробластів – обов'язкового клітинного компонента дерми. Вони не тільки синтезують і організовують компоненти екстрацелюлярного матрикса дерми, але також взаємодіють один з одним і з іншими типами клітин, відіграючи визначальну роль у регуляції гістофізіології шкіри. Інші резидентні клітини включають епідермальні, судинні і нервові клітини. Крім того, шкіра містить різні клітини гематогенного походження. Вони містять у собі конститутивну популяцію дендритних клітин і більш динамічну популяцію лейкоцитів, до складу якої входять моноцити (макрофаги), нейтрофіли і лімфоцити. Дермальні фібробласти – динамічна і різноманітна популяція клітин, функції яких у шкірі залишаються невідомими в багатьох відношеннях. Нормальна зріла шкіра людини містить, принаймні, три різні субпопуляції фібробластів, що займають характерні локуси в дермі. Фібробласти кожного з цих локусів демонструють характерні відмінності при відокремленому культивуванні. У папілярних дермальних фібробластах, що розташовані в поверхневій дермі, і в ретикулярних фібробластах, що містяться в глибокій дермі, виявляються специфічні гістофізіологічні відмінності. Обидві ці субпопуляції фібробластів відрізняються від фібробластів, що асоційовані з волосяними фолікулами. Фібробласти беруть участь у фібробласт-епідермальних взаємодіях під час розвитку волосся й в інтерфолікулярних ділянках шкіри. Вони також відіграють важливу роль у структурних перебудовах шкіри.

Посилання

Angel P, Szabowski A. Function of AP-1 target genes in mesenchymal-epithelial cross-talk in skin. Biochem Pharmacol. 2018;64:949-56.

Detmar M. Molecular regulation of angiogenesis in the skin. J Invest Dermatol. 1996;106:207-8.

Werner S, Smola H. Paracrine regulation of keratinocyte proliferation and differentiation. Trends Cell Biol. 2017;11:143-6.

Nestle FO, Nickoloff BJ. A fresh morphological and functional look at dermal dendritic cells. J Cutan Pathol. 1995;22:385-92.

Lugovic L, Lipozenocic J, Jakic-Razumovic J. Atopic dermatitis: immunophenotyping of inflammatory cells in skin lesions. Int J Dermatol. 2018;40:489-94.

Jahoda CAB, Reynolds AJ. Hair follicle dermal sheath cells: unsung participants in wound healing. Lancet. 2019;358:1445-8.

Sorrell JM, Baber MA, Caplan AI. Construction of a Bilayered dermal equivalent containing human papillary and reticular dermal fibroblasts: use of fluorescent vital dyes. Tissue Eng. 1996;2:39-49.

Sorrell JM, Carrino DA, Baber MA. A monoclonal antibody which recognizes a glycosaminoglycan epitope in both dermatan sulphate and chondroitin sulphate proteoglycans of human skin. Histochem J. 1999;31:549-58.

Akagi A, Tajima S, Ishibashi A. Expression of type XVI collagen in human skin fibroblasts: enhanced expression in fibrotic skin diseases. J Invest Dermatol. 1999;113:246-250.

Tajima S, Pinnell SR. Collagen synthesis by human skin fibroblasts in culture: studies of fibroblasts explanted from papillary and reticular dermis. J Invest Dermatol. 1981;77:410-2.

Moulin V, Auger FA, Garrel D, Germain L. Role of wound healing myofibroblasts on re-epithelialization of human skin. Burns. 2000;26:3-12.

Marinkovich MP, Keene DR, Rimberg CS, Burgeson RE. Cellular origin of the dermal-epidermal basement membrane. Dev Dyn. 1993;197:255-67.

Monical PL, Kefalides NA. Coculture modulates laminin synthesis and mRNA levels in epidermal keratinocytes and dermal fibroblasts. Exp Cell Res. 1994;210:154-9.

Rubin JS, Bottaro DP, Chedid M. Keratinocyte growth factor. Cell Biol Int. 1995;19:399-411.

Bernerd F, Asselineau D. Successive alteration and recovery of epidermal differentiation and morphogenesis after specific UVB-damages in skin reconstructed in vitro. Dev Biol. 1997;183:123-38.

Szabowski A, Maas-Szabowski N, Andrecht S. c-Jun and JunB antagonistically control cytokine-regulated mesenchymal-epidermal interaction in skin. Cell. 2000;103:745-55.

Andreadis ST, Hamoen KE, Yarmush ML, Morgan JR. Keratinocyte growth factor induces hyperproliferation and delays differentiation in a skin equivalent model system. FASEB J. 2001;15:898-906.

Suzuki K, Yamanishi K, Mori O. Defective terminal differentiation and hypoplasia of the epidermis in mice lacking the Fgf10 gene. FEBS Lett. 2000;481:53-6.

Kulessa H, Turk G, Hogan BLM. Inhibition of Bmp signaling affects growth and differentiation in the anagen hair follicle. EMBO J. 2000;19:6664-74.

Botchkarev VA. Bone morphogenetic proteins and their antagonists in skin and hair follicle biology. J Invest Dermatol. 2003;120:35-47.

Botchkarev VA, Botchkareva NV, Roth W. Noggin is a mesenchymally derived stimulator of hair-follicle induction. Nat Cell Biol. 1999;1:158-64.

Millar SE. Molecular mechanisms regulating hair follicle development. J Invest Dermatol. 2002;118:216-25.

Gailit J, Clark RAF. Wound repair in the context of extracellular matrix. Curr Opin Cell Biol. 1994;6:717-25.

Adzick NS, Lorenz HP. Cells, matrix, growth factors, and the surgeon. The biology of scarless fetal wound repair. Ann Surg. 1994;220:10-8.

Agren MS, Steenfos HH, Dabelsteen S. Proliferation and mitogenic response to PDGF-BB of fibroblasts isolated from chronic venous leg ulcers is ulcer-age dependent. J Invest Dermatol. 1999;112:463-9.

Bernerd F, Asselineau D. UVA exposure of human skin reconstructued in vitro induces apoptosis of dermal fibroblasts: subsequent connective tissue repair and implications in photoaging. Cell Death Differ. 1998;5:792-802.

Michel M, Germain L, Auger FA. Anchored skin equivalent cultured in vitro: a new tool for percutaneous absorption studies. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 1993;29:834-7.

Ponec M. Skin constructs for replacement of skin tissues for in vitro testing. Adv Drug Deliv Rev. 2002;54:19-30.

Chang HY, Chi JS, Dudoit S. Diversity, topographic differentiation, and positional memory in human fibroblasts. Proc Natl Acad Sci USA. 2002;99:12877-82.

##submission.downloads##

Опубліковано

2024-04-29

Номер

Розділ

Статті