Особливості викладання будови селезінки людини в курсі гістології
Ключові слова:
селезінка людини, видоспецифічні ознаки, відкрите кровопостачання, маргінальний синус.Анотація
РЕФЕРАТ. Лімфоїдні органи характеризуються великою кількістю видоспецифічних ознак, що залежать від розмірів тіла, рівня рухової активності, характеру живлення та багатьох інших факторів. Тому з'являється безліч суперечливих наукових статей, у яких автори порівнюють органи цієї системи без урахування видової приналежності тварин, що вивчаються, або екстраполюють отримані дані на людину, що неминуче призводить до плутанини. Селезінка є важливим органом імунної системи, тому що фільтрує кров від чужорідних антигенів, виробляє антитіла та прозапальні цитокіни при системних запальних захворюваннях. У науковій літературі багато суперечок щодо будови селезінки, зокрема щодо системи її кровопостачання. Одні автори стверджують, що селезінка має поєднання відкритих та закритих кровоносних капілярів, інші стверджують, що кровообіг у селезінці людини повністю відкритий. Наявність маргінального синусу, а також перимаргінального кавернозного синусу у відповідній зоні білої пульпи також є предметом дискусій. Відповідно до останніх відкриттів, зроблених за допомогою імуноцитохімії та тривимірного моделювання, переглянуто та переосмислено такі терміни, як «периартеріальні макрофагічні муфти» або «макрофагоцитарні піхви» та «тяжі Більрота». Ще одним актуальним питанням є можливість селезінки людини зберігати резервну порцію крові та вводити її в кровообіг при фізичному навантаженні, стресі або після масивної крововтрати. У цьому огляді ми проаналізували видоспецифічні особливості будови та функцій селезінки людини, щоб відповісти на всі перераховані вище спірні питання. Також розглянуто взаємозв'язки між особливостями іннервації та імунними процесами у селезінці.
Посилання
Mesche AL. Junqueira's Basic Histology Text & Atlas (15th ed.). McGraw-Hill Medical; 2018. 562 р. doi: https://doi.org/10.26641/1997-9665.2019.3.101-104
Wojciech P, Ross MH. Histology: A Text and Atlas: With Correlated Cell and Molecular Biology. Eighth Edition. Philadelphia: LWW; 2018. 928 р. doi: https://doi.org/10.26641/1997-9665.2019.4.76-89
Lucyk OD, Chajkovs'kyj JuB, Barіnov EF, Bіlash SM, Bilyj RO, Bobryshheva ІV, Bojchuk TM, Vas'ko LV, Volkov KS, Gerashhenko SB, Djel'cova OІ, Jeroshenko GA, Zaharov AA, Kashhenko SA, Lysachegnkoo OD, Maslovs'kyj S Ju, Mel'nyk NO, Nakonechna OV, Pelypenko LB, Sіlkіna JuV, Stechenko LO, Sokurenko LM, Sulajeva OM, Ul'janov VІ, Shepіt'ko VІ, Shepіt'ko KV, Jashhenko AM. Gistologija. Cytologija. Embri-ologija: nacional'nyj pidruchnyk dlja studentiv vys-hhyh navchal'nyh zakladiv MOZ Ukrai'ny [Histology. Cytology. Embryology: a national textbook for students of higher educational institutions of the Ministry of Health of Ukraine]. Vinnycja: Nova Knyga; 2018. 496 p. Ukrainian.
Afanas'ev JuI, Jurina NA, Aleshin BV, Vinnikov JaA, Katinas GS, Kotovskij EF, Radostina AI. Gistologija, jembriologija, citologija: uchebnik [Histology, embryology, cytology: a textbook]. Moscow: GJeOTAR-Media; 2016. 800 p. Russian.
Ruddle NH. Lymphatic vessels and tertiary lymphoid organs. The Journal of clinical investigation. 2014;124(3):953-959. doi: https://doi.org/10.1172/JCI71611
Prassopoulos P, Daskalogiannaki M, Raissaki M, Hatjidakis A, Gourtsoyiannis N. Determination of normal splenic volume on computed tomography in relation to age, gender and body habitus. Europian Radiology. 1997;7(2):246-248. doi: 10.1007/s003300050145
Hartwig H, Hartwig HG. Structural characteristics of the mammalian spleen indicating storage and release of red blood cells. Aspects of evolutionary and environmental demands. Experientia. 1985;41(2):159-163. doi: 10.1007/BF02002608
Udroiu I. Storage of Blood in the Mamma-lian Spleen: an Evolutionary Perspective. Journal of mammalian evolution. 2017;24(3):243–260. doi: https://doi.org/10.1007/s10914-016-9342-0
Persson S. On blood volume and working capacity in horses. Studies of methodology and physiological and pathological variations. Stockholm: Acta Veterenaria Scandinavica; 1967. 189 p. URL: https://lib.ugent.be/catalog/rug01:002176252
Stewart IB, McKenzie DC. The human spleen during physiological stress. Sports Medicine. 2002; 32(6):361-369. doi: 10.2165/00007256-200232060-00002
Stewart IB, Warburton DE, Hodges AN, Lyster DM, McKenzie DC. Cardiovascular and splenic responses to exercise in humans. Journal of applied physiology. 2003; 94(4):1619-26. doi: 10.1152/japplphysiol.00040.2002
Espersen K, Frandsen H, Lorentzen T, Kan-strup IL, Christensen NJ. The human spleen as an erythrocyte reservoir in diving-related interventions. Journal of applied physiology. 2002; 92(5): 2071-2079. doi: 10.1152/japplphysiol.00055.2001
Katz TC, Singh MK, Degenhardt K, Rivera-Feliciano J, Johnson RL, Epstein JA, Tabin CJ. Distinct compartments of the proepicardial organ give rise to coronary vascular endothelial cells. De-velopmental cell. 2012;22(3):639–650. doi: https://doi.org/10.1016/j.devcel.2012.01.012
Mebius RE. Kraal G. Structure and function of the spleen. Nature Reviews Immunology. 2005; 5(8):606–616. doi: 10.1038/nri1669
Guisado Vasco P, Villar Rodríguez JL, Ibañez Martínez J, González Cámpora R, Galera Davidson H. Immunohistochemical organization patterns of the follicular dendritic cells, myofibroblasts and macrophages in the human spleen--new considerations on the pathological diagnosis of splenectomy pieces. International journal of clinical and experimental pathology. 2009; 3(2):189–202.
Steiniger B, Barth P, Hellinger A. The perifollicular and marginal zones of the human splenic white pulp do fibroblasts guide lymphocyte immigration?. The American journal of pathology. 2001;159(2):501–512. doi: 10.1016/S0002-9440(10)61722-1
Yamamoto K, Arimasa N, Yamamoto T, Tokuyama K, Kobayashi T, Itoshima T. Scanning electron microscopy of the parimarginal cavernous sinus plexus of the human spleen. Scanning electron microscopy. 1979;3(3):763–768.
Schmidt EE, MacDonald IC, Groom AC. Microcirculatory pathways in normal human spleen, demonstrated by scanning electron microscopy of corrosion casts. The American journal of anatomy. 1988;181(3):253–66. doi: 10.1002/aja.1001810304
Steiniger B, Barth P. Microanatomy and Function of the Spleen. Adv Anat. Embryol. Cell. Biol. 2000;151(III-IX):1-101. doi: 10.1007/978-3-642-57088-9. PMID: 10592524
Steiniger B, Barth P, Herbst B, Hartnell A, Crocker PR. The species-specific structure of microanatomical compartments in the human spleen: strongly sialoadhesin-positive macrophages occur in the perifollicular zone, but not in the marginal zone. Immunology. 1997; 92(2):307–316. https://doi.org/10.1046/j.1365-2567.1997.00328.x
Steiniger BS, Ulrich C, Berthold M, Guthe M, Lobachev O. Capillary networks and follicular marginal zones in human spleens. Three-dimensional models based on immunostained serial sections. PLoS One. 2018;13(2):e0191019. doi: 10.1371/journal.pone.0191019.
Blue J, Weiss L. Periarterial macrophage sheaths (ellipsoids) in cat spleen--an electron microscope study. The American journal of anatomy. 1981; 161(2): 115–34. doi: 10.1002/aja.1001610202.
Steiniger BS, Seiler A, Lampp K, Wilhelmi V, Stachniss V. B lymphocyte compartments in the human splenic red pulp: capillary sheaths and periarteriolar regions. Histochemistry and Cell Biology. 2014; 141: 507–518. doi: 10.1007/s00418-013-1172-z
Steiniger BS. Human spleen microanatomy: why mice do not suffice. Immunology. 2015; 145(3):334–46. doi: 10.1111/imm.12469
Steiniger B, Bette M, Schwarzbach H. The open microcirculation in human spleens: a three-dimensional approach. The journal of histochemistry and cytochemistry official journal of the Histochemistry Society. 2011; 59(6):639–648. doi: 10.1369/0022155411408315
Young B, Woodford P, O'Dowd G. Wheater's functional histology: a text and colour atlas. Philadelphia: Elsevier Health Sciences; 2013. 464p. Available from: https://www.elsevier.com/books/wheaters-functional-histology/young/978-0-7020-4747-3
MacDonald IC, Ragan DM, Schmidt EE, Groom AC. Kinetics of red blood cell passage through interendothelial slits into venous sinuses in rat spleen, analyzed by in vivo microscopy. Micro-vasc Res. 1987;33(1):118-34. doi: 10.1016/0026-2862(87)90011-2
Chen LT, Weiss L. The role of the sinus wall in the passage of erythrocytes through the spleen. Blood. 1973;41(4):529-37. doi: 10.1182/blood.V41.4.529.529.
Ultmann JE, Gordon C S. The removal of in vitro damaged erythrocytes from the circulation of normal and splenectomized rats. Blood. 1965; 26(1): 49-62. doi: 10.1182/blood.V26.1.49.49
Schmidt EE, MacDonald IC, Groom AC. Comparative aspects of splenic microcirculatory pathways in mammals: the region bordering the white pulp. Scanning Microsc. 1993;7(2):613-28. Available from: https://api.semanticscholar.org/CorpusID:25460319
Groom AC, MacDonald IC, Schmidt EE. Splenic Microcirculatory Blood Flow and Function with Respect to Red Blood Cells. In: Bowdler A.J. (eds). The Complete Spleen. Humana Press, Totowa, NJ, 2002: 23-50. doi: 10.1007/978-1-59259-124-4_3.
Naito M, Hayashi S, Yoshida H, Nishikawa S, Shultz LD, Takahashi K. Abnormal differentia-tion of tissue macrophage populations in 'osteopetrosis' (op) mice defective in the production of macrophage colony-stimulating factor. Am J Pathol. 1991 Sep;139(3):657-67. Available from: https://www.researchgate.net/publication/21267852_Abnor-mal_differentiation_of_tissue_macrophage_populations_in_'osteopetrosis'_op_mice_defective_in_the_production_of_macrophage_colony-stimulating_factor_M-CSF_or_CSF-1
Vidal S, Tremblay ML, Govoni G, Gauthier S, Sebastiani G, Malo D, Skamene E, Olivier M, Jothy S, Gros P. The Ity/Lsh/Bcg locus: natural re-sistance to infection with intracellular parasites is abrogated by disruption of the Nramp1 gene. J Exp Med. 1995;182(3):655-66. doi: 10.1084/jem.182.3.655.
Borges da Silva H, Fonseca R, Pereira RM, Cassado Ados A, Álvarez JM, D'Império Lima MR. Splenic Macrophage Subsets and Their Function during Blood-Borne Infections. Front Immunol. 2015;6:480. doi: 10.3389/fimmu.2015.00480.
Standring S. (Ed.). Gray's Anatomy, 42nd Edition. Edinburgh: Churchill Livingstone/Elsevier; 2020;1606 p. Available from: http://www.clinicalkey.com/dura/browse/bookChapter/3-s2.0-B9780443066849X5001X
Heusermann U, Stutte HJ. Electron Micro-scopic Studies of the Innervation of the Human Spleen. Cell and Tissue Research. 1977;184(2): 225–236. doi:10.1007/BF00223070
Felten DL, Felten SY, Carlson SL, Ol-schowka JA, Livnat S. Noradrenergic and peptider-gic innervation of lymphoid tissue. J Immunol. 1985;135(2 Suppl):755s-765s. Available from: https://www.jimmunol.org/content/135/2/755
Murray K, Reardon C. The cholinergic anti-inflammatory pathway revisited. Neurogastroenterol Motil. 2018;30(3):10.1111/nmo.13288. doi: 10.1111/nmo.13288
Borovikova L, Ivanova S, Zhang M, Yang H, Botchkina GI, Watkins L R, Wang H, Abumrad N, Eaton JW, Tracey KJ. Vagus nerve stimulation attenuates the systemic inflammatory response to endotoxin. Nature. 2000; 405:458–462. doi: 10.1038/35013070
Guyot M, Simon, T, Panzolini C, Ceppo F, Daoudlarian D, Murris E, Macia E, Abélanet S, Sridhar A, Vervoordeldonk MJ, Glaichenhaus N, Blancou P. Apical splenic nerve electrical stimulation discloses an anti-inflammatory pathway relying on adrenergic and nicotinic receptors in myeloid cells. Brain, behavior, and immunity. 2019; 80:238-246. doi: 10.1016/j.bbi.2019.03.015
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative commons Attribution 4.0 International (CC BY 4.0), яка дозволяє іншим особам вільно поширювати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи в цьому журналі.
Автори, направляючи рукопис до редакції журналу «Morphologia», погоджуються з тим, що редакції передаються права на захист і використання рукопису (переданого до редакції матеріалу, в тому числі таких об'єктів, що охороняються авторським правом, як фотографії автора, малюнки, схеми, таблиці і т.п.), в тому числі на відтворення в пресі і в мережі Інтернет; на поширення; на переклад рукопису на будь-які мови; експорту та імпорту примірників журналу зі статтею Авторів з метою поширення, доведення до загального відома. Зазначені вище права Автори передають Редакції без обмеження терміну їх дії і на території всіх країн світу без обмеження.
Автори гарантують, що вони мають виняткові права на використання матеріалів, переданих до редакції. Редактори не несуть відповідальності перед третіми особами за порушення гарантії, надані авторами. Розглянуті права передаються до редакції з моменту підписання поточної публікації для публікації. Відтворення матеріалів, опублікованих в журналі іншими особами та юридичними особами, можливе лише за згодою редакції, з обов'язковим зазначенням повної бібліографічного посилання первинної публікації. Автори залишають за собою право використовувати опублікований матеріал, його фрагменти і частини для навчальних матеріалів, усні презентації, підготовку дисертації дисертації з обов'язковою бібліографічною посиланням на оригінальну роботу. Електронна копія опублікованій статті, що завантажується з офіційного веб-сайту журналу в форматі .pdf, може бути розміщена авторами на офіційному веб-сайті їх установ, будь-яких інших офіційних ресурсах з відкритим доступом.
