Структурна організація судинно-жирових аркад великого чепця білих щурів

Автор(и)

Ключові слова:

Великий чепець, судинно-жирові аркади, молочні плями, серозно-сіткоподібні перетинки, білі щури.

Анотація

Актуальність. Раніше великий чепець вважали інертною жировою тканиною, яка забезпечувала ізоляцію черевної порожнини, але в даний час він визнаний активним імунологічним органом зі складною структурою, який винятково захищає органи черевної порожнини від різних патологічних процесів, є похідним очеревини, та характеризується значною індивідуальною варіативністю за рахунок форми, розмірних характеристик та структурних елементів у вигляді специфічних судинно-жирових аркадних тканинних комплексів які сполучаються за допомогою проміжних серозних утворів. Мета. Вивчити структурну організацію судинно-жирових аркад великого чепця білих щурів. Методи. В експерименті задіяно 20 білих щурів-самців репродуктивного віку, масою від 278,08 до 346,47 грам. Матеріалом слугували тотальні препарати великого чепця, забарвлені гематоксилін-еозином, 1% розчином метиленового синього на 1% розчині бури, а також препарати з ін'єкцією кровоносного русла тушшю з желатином. Результати. При вивченні загальної характеристики судинно-жирових аркад виявлено що в одному випадку вони мають вигляд рівномірних за шириною і товщиною непрозорих, петлеподібно анастомозуючих між собою смужок, в центрі яких пролягають тонкі прошарки кровоносних судин. В іншому випадку подібні утворення мають за своєю протяжністю грудкоподібну форму, яка представлена рядами, що чергуються між собою, різних за розміром часток жирової тканини, розташованих за ходом кровоносних судин. Також зустрічаються і різні комбіновані варіанти, всі вони є індивідуальним (фенотиповим) проявом відкладення у чепці жирової тканини. При цьому, у всіх випадках, дані судинно-жирові аркади в нативному вигляді мають подібне червоне забарвлення за рахунок крові, яка міститься в густому мікросудинному руслі. Висновок. Судинно-жирові аркади великого чепця білих щурів-самців, мають вигляд бахромчастих смужок, або можуть мати грудкоподібну форму, в межах яких з обох боків осьових кровоносних судин розташовані молочні плями. Молочні плями у великому чепці білих щурів стають доступними для візуального вивчення лише при фарбуванні його тотальних препаратів базофільними барвниками. При цьому одні з них (найменші) знаходяться в товщі жирової тканини, примикаючи до осьових судин, а інші (найбільші) – за її межами. Поряд із ними мають місце і такі форми, які займають проміжне положення.

Посилання

Ignjatovic M. [Morphology and vascularization of the greater omentum]. Vojnosanit Pregl. 1997;54(4):311-320. Russian.

Meza-Perez S, Randall TD. Immunological Functions of the Omentum. Trends Immunol. 2017;38(7):526-536. DOI:10.1016/j.it.2017.03.002

Iizuka T, Ono M, Yamazaki R, Kagami K, Mitani Y, Sakai S, Fujiwara H. Wavy Floating Greater Omentum Findings Are Useful for Differentiating the Etiology of Fetal Ascites. Diagnostics. 2021;11(2):326. DOI: 10.3390/diagnostics11020326.

Di Nicola V. Omentum a powerful biological source in regenerative surgery. Regen Ther. 2019;11:182-191. DOI:10.1016/j.reth.2019.07.008

Liu J, Geng X, Li Y. Milky spots: omental functional units and hotbeds for peritoneal cancer metastasis. Tumour Biol. 2016;37(5):5715-5726. DOI: 10.1007/s13277-016-4887-3.

Maksymenko O, Hryn V, Kostylenko Y. [General plan of the structure and principles of morphometric analysis of the greater omentum of white rats]. APMM. 2022;22(1):105-110. Ukrainian. DOI:10.31718/2077-1096.22.1.105.

European Parliament. [Directive 2010/63 / EIA of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes]. Official Journal L. 2010;276:33-79. Russian.

Ministry of Education and Science, Youth and Sports of Ukraine. [Order of the Ministry of Education and Science, Youth and Sports of Ukraine No. 249 dated 01.03.2012]. Ofitsiynyy visnyk Ukrayiny. 2012;24:82. Ukrainian.

Rybakova A, Makarova M. [Sanitary control of experimental clinics (vivariums) in accordance with local and international requirements]. Mezhdunarodnyy vestnik veterinarii. 2015;4;81-89. Russian.

Hryn VH, Brovarnyk YAO, inventors; Higher State Education Institution “Ukrainian Medical Stomatological Academy”, assignee. Operating and preparation table with fixators for laboratory rats. Ukrainian patent UA 142955. 2020 Jul 10. Ukrainian. Available from: http://repository.pdmu.edu.ua/bitstream/123456789/13459/1/H_B_patent_2020.pdf.

Gorbacheva A. [Comparative evaluation of some methods of mammal vascular network filling]. Nauchnyy rezultat. 2016;2(8):3-8. Russian.

Ackermann PC, De Wet PD, Loots GP. Microcirculation of the rat omentum studied by means of corrosion casts. Acta Anat. 1991;140(2):146-149. DOI: doi:10.1159/000147051

Vdoviaková K, Petrovová E, Maloveská M, Krešáková L, Teleky J, Elias MZ. Surgical Anatomy of the Gastrointestinal Tract and Its Vasculature in the Laboratory Rat. Gastroenterol Res Pract. 2016;2016:2632368. DOI: doi:10.1155/2016/2632368.

Schurink B, Cleypool CGJ, Bleys RLAW. A rapid and simple method for visualizing milky spots in large fixed tissue samples of the human greater omentum. Biotech Histochem. 2019;94(6):429-434. DOI: doi:10.1080/10520295.2019.1583375

Cruz-Migoni S, Caamaño J. Fat-Associated Lymphoid Clusters in Inflammation and Immunity. Front Immunol. 2016;7:612. DOI: 10.3389/fimmu.2016.00612.

Jackson-Jones LH, Smith P, Portman JR, Magalhaes MS, Mylonas KJ, Vermeren MM. Stromal Cells Covering Omental Fat-Associated Lymphoid Clusters Trigger Formation of Neutrophil Aggregates to Capture Peritoneal Contaminants. Immunity. 2020;52:700–715. DOI: https://doi.org/10.1016/j.immuni.2020.03.011

Cleypool CGJ, Schurink B, van der Horst DEM, Bleys RLAW. Sympathetic nerve tissue in milky spots of the human greater omentum. J Anat. 2020;236(1):156-164. DOI:10.1111/joa.13077

Solass W, Horvath P, Struller F, Königsrainer I, Beckert S, Königsrainer A. Functional vascular anatomy of the peritoneum in health and disease. Pleura Peritoneum. 2016;1(3):145-158. DOI: 10.1515/pp-2016-0015.

Lushchyk U, Lushchyk NH, Novytskyy VV, Babiy IP, Aleksyeyeva TS. [The up-to-date potential of an integrated functional estimation of the arteriovenous balance in the closed vascular system on the macro- and microlevel]. Istyna. 2006;1:100-120. Ukrainian

Silva PC, Jamel N, Refinetti RA, Manso EF, Schanaider A. Development of blood vessels of the greater omentum in the hepatic lobe after vascular ligation. An experimental model in the rats. Acta Cir Bras. 2006;21(6):416-421. DOI: doi:10.1590/s0102-86502006000600011

Williams R. Angiogenesis and the greater omentum. Springer. 1990;1:50-69. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4612-3436-4_4

Rangel-Moreno J, Moyron-Quiroz JE, Carragher DM, Kusser K, Hartson L, Moquin A. Omental milky spots develop in the absence of lymphoid tissue-inducer cells and support B and T cell responses to peritoneal antigens. Immunity. 2009;30(5):731-743.

Carlow DA, Gold MR, Ziltener HJ. Lymphocytes in the peritoneum home to the omentum and are activated by resident dendritic cells. J Immunol. 2009;183(2):1155-1165. DOI:10.4049/jimmunol.0900409

Liu M, Silva-Sanchez A, Randall TD, Meza-Perez S. Specialized immune responses in the peritoneal cavity and omentum. J Leukoc Biol. 2021;109(4):717-729. DOI: 10.1002/JLB.5MIR0720-271RR.

Barington L, Christensen LVV, Pedersen KK, Niss Arfelt K, Roumain M, Jensen KHR et al. GPR183 Is Dispensable for B1 Cell Accumulation and Function, but Affects B2 Cell Abundance, in the Omentum and Peritoneal Cavity. Cells. 2022;11(3):494. DOI: 10.3390/cells11030494.

Hryn V. Planimetric correlations between Peyer’s patches and the area of small intestine of white rats. Rep. of Morph. 2018;2(24):66-72. DOI: 10.31393/morphology-journal-2018-24(2)-10.

Hryn VH, Kostylenko YP, Bilash VP, Ryabushko OB. Microscopic structure of albino rats' small intestine. Wiad Lek. 2019;72(5):733-738. PMID: 31175762.

Hryn VH. [The general principle of the structure of lymphoid nodules of peyer’s patches of the small intestine of white rats]. Visnyk problem biolohiyi i medytsyny. 2019;2(2):200-204. Ukrainian. DOI: 10.29254/2077-4214-2019-2-2-151-200-204

Hryn V. Internal structure of the lymphoid nodules of the peyer's patches of small intestine in albino rats. Georgian Med News. 2019;296:122-126. PMID: 31889718.

Hryn VH. [Immunogistochemical analysis of peyer’s patches of the albino rats’ small intestine is normal]. Visnyk problem biolohiyi i medytsyny. 2020;1(155):292-296. Ukrainian. DOI: 10.29254/2077-4214-2020-1-155-292-296

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-10-15

Номер

Розділ

Статті