Морфофункціональні особливості структурних компонентів очного яблука в порівняльно-видовому аспекті та при різних патологічних процесах (оглядова стаття)

Автор(и)

  • O.M. Slobodyan Буковинський державний медичний університет, Україна
  • O.Yu. Vovk Харківський національний медичний університет, Україна
  • I.V. Chelpanova Львівський національний медичний університет ім. Данила Галицького, Україна
  • Yu.V. Hnidyk Львівський національний медичний університет ім. Данила Галицького, Україна

Ключові слова:

очне яблуко, міжвидові особливості, патологічний вплив, моделі.

Анотація

Мета дослідження – дослідити морфофункціональні особливості структурних компонентів очного яблука в порівняльно – видовому аспекті та при різних патологічних процесах. Для досягнення поставленої мети нами було опрацьовано джерела наукової медичної вітчизняної та світової літератури. Результати. Налбуфін — синтетичний опіоїдний анальгетик, синонім - Nubain, (–)- 17-(cyclobutylmethyl)- 4,5б-epoxymorphinan- 3,6б,14-triol hydrochloride. За хімічною структурою близький до групи морфінану та фенантрену. За фармакологічною дією відноситься до групи агоністів-антагоністів опіоїдних рецепторів (пентазоцин, бупренорфін, буторфанол), з агоністичним впливом на к- рецептори, та антагоністичним — на м-рецептори, з чим пов`язаний його малий вплив на психоемоційний стан пацієнтів, порівняно із морфіном, та фактична відсутність до звикання, при терапевтичних дозах та короткому курсі використання. Крім того, відзначається значно нижчий ризик респіраторних ускладнень та ускладнень з боку ШКТ, при силі знеболюючої дії, подібної до морфіну. Співвідношення сили анальгетичної дії та ризику різноманітних ускладнень, включаючи ефект насичення «ceiling effect» (досягнення певного порогу та подальша відсутність ефекту при наростанні дози), найбільше, у порівнянні з іншими агоністами- антагоністами – пентазицин або бупренорфін, що він, фактично, єдиний із даної групи фармацевтичних препаратів, має широке клінічне використання на сьогодні. На його широке використання впливає той факт, що він є одним із небагатьох препаратів групи опіоїдів, що офіційно не внесені в групу наркотичних та психотропних речовин. Errick J., Heel R. (1983), висвітлювали питання ефекту насичення є неоднозначним в експериментальних роботах, оскільки з самого початку досліджень була відзначена видова залежність даного ефекту - порізному проявлявся у дослідах на щурах та собаках. У сітківці приматів добре вивчена морфологія, фізіологія і центральні проекції трьох великих класів гангліонарних клітин- парасолькових, карликових і малих бістратифікованих нейронів. Серед парасолькових нейронів вирізняють великі нейрони М-типу та малі парасолькові нейрони Р2-типу. Карликовий гангліонарний нейрон має видовжене тіло і один апікальний дендрит. Гангліонарні нейрони транслюють сигнали в стріарну кору, а також встановлюють синаптичні контакти з нейронами латерального колінчастого тіла. Карликові гангліонарні нейрони, як самостійний тип, у сітківці приматів уперше описав в 1941 році S. Polyak]. Пізніше ці нейрони були ідентифіковані в сітківці макаки і людини. Великі парасолькові нейрони досягають значної щільності біля центральної ямки. Їхні розміри можуть бути від 25 мкм у центрі до 75 мкм на відстані 14 мм від центральної ямки. Формування гангліонарного шару в людини починається на 7-му тижні ембріогенезу і випереджує розвиток інших клітин сітківки. У щурів подібні процеси відбуваються між 13- 19 добами ембріонального розвитку. У мишей диференціація починається з 11-ї доби ембріогенезу. На 13-у тижні ембріогенезу гангліонарні клітини мають добре розвинений аксон і розвинене дендритне поле, автор також відмітила, що аксони раніше формують зоровий нерв ніж формується дендритне поле. Висновок. Підсумовуючи наукову літературу виявивлено певні суперечності щодо морфології структурних компоненті очного яблука щура, а також у порівняльно-видовому аспекті. Є значна кількість наукових праць як в галузі експериментальної, так і клінічної офтальмології, які присвячені дослідженню структурних компонентів очного яблука при різних нозологічних формах патології, однак обмежена кількість повідомлень, присвячених вивченню проблематики що стосується опіоїдної ангіонейроретинопатій.

Посилання

Gal TJ, DiFazio CA, Moscicki J. Analgesic and respiratory depressant activity of nalbuphine: a comparison with morphine. Anesthesiology. 1982;57(5):367–374.

Errick J, Heel R. Nalbuphine. Drugs. 1983;26(3):191–211.

Schmidt WK, Tam SW, Shotzberger GS, Smith DH, Clark R, Vernier VG. Nalbuphine. Drug Alcohol Depend. 1985;14(3):339–362.

Pallasch TJ, Gill CJ. Butorphanol and nalbu-phine: a pharmacologic comparison. Oral Surg Oral Med Oral Pathol. 1985;59(1):15–20.

Bahar M, Rosen M, Vickers M. Self-administered nalbuphine, morphine and pethidine. Anaesthesia. 1985;40(6):529–532.

Kantor TG, Hopper M. Oral nalbuphine in postpartum pain. Clin Pharmacol Ther. 1984;35(1):46–49.

Sherer DM, Cooper EM, Spoor C, Serletti BL, Woods JR. Resolution of marked intrapartum fetal tachycardia following intravenous nalbuphine hydrochloride. Am J Perinatol. 1994;11(05):367–368.

Grigorenko S, Grigorenko A, Vityuk N. [Ex-perience with Nalbufin Rusan Pharma LTD in me-tastatic bone disease]. Mystetstvo Likuvannya. 2013;9:13–14. Russian.

Radomskiy V, Seryogina N, Ostapenko I. [Experience of using Nalbuphine in radiation treat-ment of bone metastases]. Ukrainian Medical Almanac. 2014;17(3):82–84. Russian.

Paltov EV, Chelpanova IV, Fik VB, Vilkhova IV, Kyryk KhA, Kryvko YuYa. [Patho-morphological changes in the layers of the retina after six weeks of opioid exposure in the experi-ment]. The world of medicine and biology. 2017;2(60):146-150. Ukrainian.

Kharkovenko RV, Pushkar MS, Korol AP, Artemchuk MA, Artemchuk NM, Onyshchuk VM. [Morphology and morphometry of the retina of normal rats under conditions of hyperhomocysteinemia and its correction]. Scientific Bulletin of Uzhgorod University, Medicine series. 2009;37:51-56. Ukrainian.

Kharkovenko RV, Pushkar MS, Yashchen-ko AM. [Lectin histochemistry of the retina and optic nerve of rats in normal and hyperhomocysteinemia]. The world of medicine and biology. 2009;3:173-179. Ukrainian.

Khaled A. Glycohistochemical, Immuno-histochemical and Electron Microscopic Examina-tion of the Bovine Eyeball. Munich. 2003;1:206.

Krinke GJ. The laboratory rat. Netherlands, Amsterdam: Elsevier-Academic Press. 2000;1:289- 291.

Parker GA, Catherine A. Picut-Atlas of Histology of the Juvenile. RatAcademic Press. 2016;1:439.

Parker GA, Picut CA. Atlas of histology of the juvenile rat. Amsterdam: Elsevier-Academic Press. 2016;2:373-377.

Saldan YR, Majevsky OE, Saldan YuY, Ar-temov AV, Korol AP. [The sixth layer of the cornea: fiction or real fact?] Reports of morphology. 2016;2(22):395-399. Ukrainian.

Saldan YuY. [Diagnostic significance of spectral coherence tomography in corneal diseases]. Herald of Morphology. 2013;1(19):115-118. Ukrainian.

Parkhomenko OG. [Optimizing the diagno-sis of diabetic maculopathy: autoref. Thesis candi-date med. science]. National. med. Acad. postgra-duate education named after P. L. Shupyk. 2016;1:20. Ukrainian.

Savchuk ZL, Klish IM, Gerasimyuk IE. [Peculiarities of the reorganization of the structures of the cornea of rabbits with its chemical burn against the background of mercazolyl-induced hypothyroidism]. Journal of Health Sciences. 2014;4(14):190-200. Ukrainian.

Gerasemyuk IE, Romanyuk TI. [The nature and peculiarities of the dynamics of morphological changes in the tissues of the rabbit's eye during burns of the cornea with alkali]. Herald of scientific research. 2013;4:84-87. Ukrainian.

Ivanchenko MV, Galayda NA. [Morpho-logical assessment of the state of scar tissue and different layers of the cornea after a penetrating wound]. Morphology. 2015;9(4):31-36. Russian.

Yakymov N.Y., Kryvko Y.Y. [Microstruc-tural characteristics of the iris-corneal angle of the eyeball of rats under opioid influence]. The world of medicine and biology. 2013;1:120–124. Ukrainian.

West-Mays JA, Dwivedi DJ. The kerato-cyte: Corneal stromal cell with variable repair phe-notypes. Int J Biochem Cell Biol. 2006;38(10):1625–1631.

Wilson SE, Chaurasia SS, Medeiros FW. Apoptosis in the initiation, modulation and termina-tion of the corneal wound healing response. Exp. Eye Res. 2007;85(3):305–11. DOI:10.1016/j.exer.2007.06.009.

Müller LJ, Pels L, Vrensen GF. Novel as-pects of the ultrastructural organization of human corneal keratocytes. Invest. Ophtalmol. Vis.Sci. 1995;36(13):2557–2567.

Jester JV. Corneal crystallins and the de-velopment of cellular transparency. Semin. Cell Dev. Biol. 2008;19(2):82–93.

Lassen N, Black WJ, Estey T, Vasiliou V. The role of corneal crystallins in the cellular defense mechanisms against oxidative stress. Semin. Cell Dev. Biol. 2008;19(2):100–112.

Lassen N, Pappa A, Black WJ, Jester JV, Day BJ, Min E, Vasiliou V. Antioxidant function of corneal ALDH3A1 in cultured stromal fibroblasts. Free Radic. Biol. Med. 2006;41(9):1459–69.

Funderburgh JL. Keratan sulfate: structure, biosynthesis,and functoin. Glycobiology. 2000;10(10):951-958.

Tchaikovsky YB, Deltsovva OI, Herash-chenko SB. [Stem cells of the organ of vision and their participation in the regeneration of eyeball tis-sues]. Ophthalmological journal. 2013;3:83-91. Ukrainian.

Tsai CL, Wu PC, Fini ME, Shi S. Identifi-catio of multipotent stem/progenitor cells in murine sclera. Invest. Ophtalmol. 2011;52(8):5481-5487.

Du Y, Roh DS, Mann MM, Funderburgh ML, Funderburgh JL, Schuman JS. Multipotent stem cells from trabecular meshwork become phagocytic TM cells. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.2012;53(3):1566-1575.

Kolb H, Nelson R, Ahnelt P, Cuenca N. Cellular organization of the vertebrate retina. In: Kolb H, Ripps H, Wu S, editors. Prog. Brain Res. Concepts and challenges in retinal biology. Elsevier. 2001;2:23-26.

Lucas RJ. Mammalian inner retinal photo-reception. Curr. Biology. 2013;23:125-133.

Matveeva NU. [Apoptosis and nitric oxide in the development of retinal neurons]. Medicine. 2006;1:75-86. Russian

Kanjhan R, Sivyer B. Two types of ON di-rection-selective ganglion cells in rabbit retina. Neu-rosci. Lett. 2010;483(2):105-109.

Coimbra JP, Collin SP, Heart NS. Topo-graphic specializations in the retinal ganglion cell layer of Australian passerines. J. Comp. Neurol. 2014;552(16):3609-3628.

Deltsova OI, Vadyuk RL. [Morphofunc-tional state of the retina under the influence of Cis-platinum in the experiment]. Scientific Bulletin of Uzhgorod University, Medicine series. 2010;38:27-32. Ukrainian.

Dovha NZ. [An electron microscopic study of the effects of Paklitakselum on the retina in an experiment]. The world of medicine and biology. 2016;4(58):98-101. Ukrainian.

Zhmuryk DV, Dumbrova NE, Molchanyuk NI, Mylienko MV. [Electron-microscopic examina-tion of the retina during tamponade of the vitreous cavity with organo-perfluoro compounds]. Ophthalmological journal. 2014;5:46-52. Ukrainian.

Maksimuk OJ, Voskresenska LK, Ryadno-va VV, Lyakhovska AV. [Histological and ultra-structural changes of retinal blood vessels under conditions of experimental thrombosis]. Reports of problems of biology and medicine. 2011;2(2):176-178. Ukrainian.

Pidvalna UE. [The morphological basis of the safe use of nalbuphine on the example of the choroid of the eyeball]. Experimental and clinical medicine. 2014;3(64):117-120. Ukrainian.

Ulyanova NA, Dumbrova NE, Molchanyuk NI. [Morphological changes in the sclera in the modeling of myopia]. Morphology. 2014;8(2):72-76. Russian.

Ulyanova NA, Wenger LV, Dumbrova NE, Molchanyuk NI. [Ultrastructural changes in the reti-na in modeling deprivation myopia]. Bulletin of morphology. 2014;2(20):293-296. Russian.

Leung CK, Ye C, Weinreb RN, Cheung CY, Qiu Q, Liu S, Xu G, Lam DS. Retinal nerve fiber layer imaging with spectral-domain optical coherence tomography a study on diagnostic agree-ment with Heidelberg Retinal Tomograph. Oph-thalmology. 2010;117(2):267-274.

Faghihi H, Hajizadeh F, Riazi-Esfahani M. Optical coherence tomographic findings in higly myopic eyes. Ophthalmic and vision research. 2010;5(2):110-121.

Polyakova SI, Bushueva NN, Kayali A, Romanenko DV, Shishkina VG. [Determination of the degree of eye mobility in patients with endocrine ophthalmopathy by the method of automated analysis of two-dimensional images of the eyeballs]. Ophthalmological journal. 2014;6:53-59. Russian.

Baillios BG, van der Kooy, Can J. Biology and therapeutic potential of adult retinalstem cells. Ophthalmol. 2010;45(4):342-351.

Fisher SK, Lewis GP, Linberg KA, Barawid E, Verardo MR. Cellular remodeling in mammalian retina induced by retinal detachment. Vision. 2007;1:1882-1886.

Shchur MB, author. [Morphofunctional and lectinohistochemical characteristics of the functional apparatus of the eyeball in normal conditions and under the conditions of thyroid gland dysfunction (experimental study)]. Ivano-Frankivsk: national med. Univ. Ivano-Frankivsk; 2018. 20 p. Ukrainian.

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-09-22

Номер

Розділ

Статті