Сучасні відомості щодо властивостей стовбурових клітин

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2021.3.17-22

Ключові слова:

стовбурові клітини, регенерація, поліпотентність, кордова кров

Анотація

Літературне дослідження присвячене висвітленню даних літератури, щодо основних властивостей стовбурових клітин. Лікування за допомогою клітин даного особливого типу, що мають здатність до самопоновлення, й у той самий час перетворення при поділі на інші спеціалізовані клітини, має можливість спричинити справжній переворот у світовій медицині. Терапевтичний ефект стовбурових клітин відкриває необмежені перспективи лікування ряду генетичних та набутих захворювань. Особливої уваги біологія стовбурових клітин заслуговує ще й з огляду на той факт що стовбурові клітини можуть існувати як в організмі так і поза ним. На сучасному етапі розвитку світової науки стовбурові клітини викликають зацікавленість серед науковців ще й тим, що вони є моделлю для вивчення процесів раннього ембріогенезу, диференціювання тканин, регенерації органів. І не варто забувати, що за останніми даними стовбурові клітини є основним компонентом розвитку злоякісних пухлинних процесів. Основними властивостями стовбурових клітин є: самопоновлення – здатність зберігати незмінний фенотип після ділення; універсальність – відсутність специфічних структур, які надають їм можливості виконувати певні функції, проте вони можуть перетворюватись на будь-яку клітину організму; потентність – диференціюючий потенціал, здатність давати нащадків у вигляді спеціалізованих типів клітин. Проведене нами дослідження джерел наукової літератури, присвячене проблемі дослідження стовбурових клітин в цілому та впровадженню в лікувальну практику використання стовбурових клітин кордової крові вказує на значну зацікавленість науковців даною тематикою. Про це свідчить значна кількість публікацій присвячених проблемі дослідження властивостей стовбурових клітин. Проте необхідно зауважити про разючу якісну та кількісну відмінність проаналізованих нами вітчизняних та закордонних джерел наукової літератури на користь опису закордонних досліджень. Вважаємо за доцільне вказати на недостатню кількість описаних якісних наукових досліджень, присвячених лікуванню стовбуровими клітинами вітчизняними науковцями. Переважна більшість даних робіт є фрагментарними та неповними. Закордонні ж джерела містять дещо суперечливі та, іноді, недостатньо аргументовані твердження. Отже вважаємо обрану нами тематику дослідження надзвичайно актуальною.

Посилання

Kiselev SL, Lagarkova MA. [Stem cells and genetic reprogramming]. Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2013;17(2):851-863. Russian

Zolotukhina EL. [Stem cells and prospects for their use in dentistry and maxillofacial surgery]. Young Scientist. 2014;09(6):145-147. Russian

Cedar SH, Minger SL. Human embryonic stem cells: A model for human aging in vitro. Experimental gerontology. 2008;43:1005-1008.

Flores I, Blasco MA. The role of telomerase in stem cell aging. FEBS Letters. 2010;584:3826-3830.

Huang J, Liu X, Li D, Shao Z, Cao H, Zhang Y, Trompouki E. Dynamic Control of Enhancer Repertoires Drives Lineage and Stage-Specific Transcription during Hematopoiesis. Dev Cell. 2016;36(1):9-23. DOI: 10.1016/j.devcel.2015.12.014.

Anderson H, Patch TC, Reddy PN, Hagedorn EJ, Kim PG, Soltis KA, Chen MJ. Hematopoietic stem cells develop in the absence of endothelial cadherin 5 expression. Blood. 2015;126(26):2811-2820. DOI: 10.1182/blood-2015-07-659276.

Merrikh-Bayat F, Guo X, Klachko M, Prezioso M, Likharev KK, Strukov DB. High-Performance Mixed-Signal Neurocomputing With Nanoscale Floating-Gate Memory Cell Arrays. IEEE Trans Neural Netw Learn Syst. 2018;29(10):4782-4790. DOI: 10.1109/TNNLS.2017.2778940.

Aversa F, Prezioso L, Manfra I, Galaverna F, Spolzino A, Monti A. Immunity to Infections after Haploidentical Hematopoietic Stem Cell Transplantation. Mediterr J Hematol Infect Dis. 2016;8(1):e2016057.

Johnson S, Atala A. Regenology: Time for a New Specialty? Stem Cells Transl Med. 2018;8(1):4–6. DOI: 10.1002/sctm.18-0101.

Wan Q, Xiong G, Liu G, Shupe TD, Wei G, Zhang D, Liang D. Urothelium with barrier function differentiated from human urine-derived stem cells for potential use in urinary tract reconstruction. Stem Cell Res Ther. 2018;9(1):304. DOI: 10.1186/s13287-018-1035-6.

Zarandi NP, Galdon G, Kogan S, Atala A, Sadri-Ardekani H. Cryostorage of immature and mature human testis tissue to preserve spermatogonial stem cells (SSCs): a systematic review of current experiences toward clinical applications. Stem Cells Cloning. 2018;11:23-38. DOI: 10.2147/SCCAA.S137873.

Liu G, Wu R, Yang B, Deng C, Lu X, Walker SJ, Ma PX. Human Urine-Derived Stem Cell Differentiation to Endothelial Cells with Barrier Function and Nitric Oxide Production. Stem Cells Transl Med. 2018;7(9):686-698. DOI: 10.1002/sctm.18-0040.

Mokhtari S, Colletti E, Yin W, Sanada C, Lamar Z, Simmons PJ, Walker S. Correction: A human bone marrow mesodermal-derived cell population with hemogenic potential. Leukemia. 2018;32(7):1670. DOI: 10.1038/s41375-018-0172-3.

Matz EL, Terlecki R, Zhang Y, Jackson J, Atala A. Stem Cell Therapy for Erectile Dysfunction. Sex Med Rev. 2019;7(2):321–328. DOI: 10.1016/j.sxmr.2017.12.008.

Mokhtari S, Colletti E, Yin W, Sanada C, Lamar Z, Simmons PJ, Walker S. A human bone marrow mesodermal-derived cell population with hemogenic potential. Leukemia. 2018;32(7):1575-1586. DOI: 10.1038/s41375-018-0016-1.

Atala A. Smooth Muscle Progenitor Cells Derived from Human Pluripotent Stem Cells Induce Histologic Changes in Injured Urethral Sphincter. J Urol. 2017;198(6):1214. DOI: 10.1016/j.juro.2017.09.040.

Davies BM, Smith J, Rikabi S, Wartolowska K, Morrey M, French A, MacLaren R. A quantitative, multi-national and multi-stakeholder assessment of barriers to the adoption of cell therapies. J Tissue Eng. 2017;8:2041731417724413. DOI: 10.1177/2041731417724413.

Khoury O, Barrios C, Ortega V, Atala A, Murphy SV. Immunomodulatory Cell Therapy to Target Cystic Fibrosis Inflammation. Am J Respir Cell Mol Biol. 2018;58(1):12-20. DOI: 10.1165/rcmb.2017-0160TR.

Kurtzberg J, Atala A. Announcing a New Journal Section: Cord Blood. Stem Cells Transl Med. 2017;6(5):1307-1308. DOI: 10.1002/sctm.17-0077.

Atala A, McAllister TN. Transforming the Approach to Cell-Based Therapies. Stem Cells Transl Med. 2017;6(5):1305-1306. DOI: 10.1002/sctm.17-0064.

Atala A. Advancing the Translation of Stem Cells to Medicine. Stem Cells Transl Med. 2017;6(1):1-2. DOI: 10.1002/sctm.16-0475.

McAllister T, Atala A. Editorial: Future Directions for Stem Cell Banking and Therapy. Curr Stem Cell Res Ther. 2017;12(1):2.

Atala A. Mesenchymal Stem Cells are Recruited and Activated into Carcinoma-Associated Fibroblasts by Prostate Cancer Microenvironment-Derived TGF-β1. J Urol. 2016;196(6):1817. DOI: 10.1016/j.juro.2016.09.014.

Sevastyanov VI. [Tissue engineering and regenerative medicine technologies]. Regenerative medicine and cell technologies. 2014;16(3):93-108. Russian

Nasadyuk HM. [Placental stem cells: biological characteristics and approaches to clinical use]. Cellular and organ transplantology. 2014;2(2):136-139. Ukrainian

Nasadyuk HM. [Biochemical characteristics and approaches to the use of placental extracts in medical practice]. With care for the woman. 2013;4(43):54-56. Ukrainian

Ma Y, Wang Z, Zhang A, Xu F, Zhao N, Xue J. Human placenta-derived mesenchymal stem cells Ameliorate GVHD by MODULATING Th17/Tr1 balance via expression of PD-L2. Life Sciences. 2018;214:98–105. DOI: 10.1016/j.lfs.2018.10.061

Kim SH, Jung J, Cho KJ, Choi JH, Lee HS, Kim GJ. Immunomodulatory effects of Placenta-derived mesenchymal stem cells on T cells by regulation Of FOXP3 EXPRESSION. International Journal of Stem Cells. 2018;11(2):196–204. DOI: 10.15283/ijsc18031.

Noh YK, Du P, Dos Santos Da Costa A, Park K. Induction of chondrogenesis of human placenta-derived mesenchymal stem cells via heparin-grafted human fibroblast derived matrix. Biomater Res. 2018;22:12. DOI: 10.1186/s40824-018-0121-2.

Ma Y, Wang Z, Zhang A, Xu F, Zhao N, Xue J. Human placenta-derived mesenchymal stem cells Ameliorate GVHD by MODULATING Th17/Tr1 balance via expression of PD-L2. Life Sciences. 2018;214:98–105. DOI: 10.1016/j.lfs.2018.10.061.

Kim SH, Jung J, Cho KJ, Choi JH, Lee HS, Kim GJ. Immunomodulatory effects of Placenta-derived mesenchymal stem cells on T cells by regulation Of FOXP3 EXPRESSION. International Journal of Stem Cells. 2018;11(2):196–204. DOI: 10.15283/ijsc18031.

Kim TH, Choi JH, Jun Y, Lim SM, Park S, Paek JY, Lee SH. 3D-cultured human placenta-derived mesenchymal stem cell spheroids enhance ovary function by inducing folliculogenesis. Sci Rep. 2018;8(1):15313. DOI: 10.1038/s41598-018-33575-9.

Naseer N, Bashir S, Latief N, Latif F, Khan SN, Riazuddin S. Human amniotic membrane as differentiating matrix for in vitro chondrogenesis. Regen Med. 2018;13(7):821-832. DOI: 10.2217/rme-2018-0017.

Sun J, Luo Z, Wang G, Wang Y, Wang Y, Olmedo M, Morandi MM. Notch ligand Jagged1 promotes mesenchymal stromal cell-based cartilage repair. Exp Mol Med. 2018;50(9):126. DOI: 10.1038/s12276-018-0151-9.

Lobintseva GS, Gladkikh YV, Lobintsev DV, inventors;

MPK, assignee. The method of operation of the freezer of biological objects. Ukrainian patent UA 14589. 2006 May 15. Int. Cl. F25Д 17/00 А01 1/02. Ukrainian.

Tavasolli M. Embrionic and fetal hemopoiesis, an overview. Blood cells. 1991;17(2):269-281.

##submission.downloads##

Опубліковано

2021-10-04

Номер

Розділ

Статті