Субмікроскопічні зміни селезінки при дії глутамату натрію та корекції мелатоніном

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2020.3.22-28

Ключові слова:

селезінка, глутамат натрію, мелатонін, щур, лімфоцити, макрофаги

Анотація

Актуальність. Глутамат натрію є однією з найпоширеніших харчових добавок в світі. Мета: вивчити електронно-мікроскопічні зміни структурних компонентів селезінки щурів при дії глутамату натрію та їх корекції мелатоніном. Методи. Експериментальне дослідження проведено на 66 білих щурах самцях і самках репродуктивного віку. Впродовж шести тижнів тварини щоденно отримували разом з їжею глутамат натрію в дозі 0,07 г/кг маси тіла, після чого впродовж двох, чотирьох та шести тижнів переходили на стандартний харчовий раціон з додаванням мелатоніну в дозі 0,01 г/кг. Зрізи селезінки виготовлені на ультрамікротомі УМТП–6М алмазним ножем (DIATOM) та проведено подвійне контрастування за Рейнольдсом та уранілацетатом. Субмікроскопічні дослідження органа проведені за допомогою електронного трансмісійного мікроскопа ТЕМ–100. Досліджуваний матеріал фотодокументований за допомогою цифрової камери SONY–H9. Результати. Щоденне вживання глутамату натрію впродовж шести тижнів призводить до глибоких деструктивних змін клітинного складу селезінки, викликає порушення в ланках судинного русла. Зокрема значно збільшується кількість лімфоцитів з ознаками апоптозу, а кількість клітин з ознаками мітозу зменшується, в цитоплазмі дендритних клітин органели з ознаками пошкодження, в навколоартеріальній зоні ознаки набряку, велика кількість активних макрофагів, цитоплазма яких містить осміофільні включення та залишки фагоцитованих клітин. Червона пульпа повнокровна, містить ділянки скупчення деформованих формених елементів крові, полісегментоядерних нейтрофілів та мегакаріоцитів. Гемокапіляри зі зменшеним просвітом. Введення мелатоніну призводить до значного відновлення структурної організації, а отже і функції даного органу. Підсумок. Мелатонін має позитивний вплив на компоненти селезінки, зміни яких були викликані дією глутумату натрію.

Посилання

Hordiienko LP, Falalieieva TM. [Changes in adipocytokines in rats under conditions of glutamate-induced obesity]. Current problems of modern medicine: Bulletin of the Ukrainian Medical Dental Academy. 2014;14,2(46):130-2. Ukrainian.

Kolenchenko OO, Falalieieva TM, Berehova TV, Kuryk OH. [The state of lipid metabolism in rats under the conditions of administration of sodium glutamate]. Current problems of modern medicine: Bulletin of the Ukrainian Medical Dental Academy. 2017;17,4-2(60):58-61. Ukrainian.

Afifi MM, Abbas AM. Monosodium glutamate versus diet induced obesity in pregnant rats and their offspring. Acta Physiol Hung. 2011;98(2):177-88. doi: 10.1556/APhysiol.98.2011.2.9.

Jin L, Lin L, Li GY, Liu S, Luo DJ, Feng Q, Sun D-S, Wang W, Liu J-J, Wang Q, Ke D, Yan X-F, Liu G-P . Monosodium glutamate exposure during the neonatal period leads to cognitive deficits in adult Sprague-Dawley rats. Neuroscience letters. 2018;682:39-44. doi:10.1016/j.neulet.2018.06.008.

Vorhees CV. A Test of Dietary Monosodium Glutamate Developmental Neurotoxicity in Rats: A Reappraisal. Ann Nutr Metab 2018;73(5):36-42. doi: 10.1159/000494781.

Konrad SP, Farah V, Rodrigues B, Wichi RB, Machado UF, Lopes HF, Schaan BD'A, Angelis KD, Irigoyen MC. Monosodium glutamate neonatal treatment induces cardiovascular autonomic function changes in rodents. Clinics. 2012;67(10):1209-14. doi: 10.6061/clinics/2012(10)14.

Bhandari U. Effect of Embelin in Monosodium Glutamate Induced Obesity in Male Neonatal Wistar Rats. Atheroscler. Suppl. 2018;32:138. doi:10.1016/j.atherosclerosissup.2018.04.423.

Navarro-Alarcón M, Ruiz-Ojeda FJ, Blanca-Herrera RM, A-Serrano MM, AcuñaCastroviejo D, Fernández-Vázquez G, Agil A. Melatonin and metabolic regulation: a review. Food Funct. 2014;5(11):2806-32. doi: 10.1039/c4fo00317a.

Cipolla-Neto J, Amaral FG, Afeche SC, Tan DX, Reiter RJ. Melatonin, energy metabolism, and obesity: a review. J Pineal Res. 2014;56(4):371-81. doi: 10.1111/ jpi.12137.

Ghada M, Fard А, Madi NM, El-Saka MH. Effect of Melatonin on Obesity and Lipid Profile in High Fat–Fed Rats. Journal of American Science. 2013;9(10):61-7.

Kalinchenko SYu, Tyuzikov IA. [Melatonin deficiency, obesity, and insulin resistance: obvious and non-obvious relationships]. Dietetics issues. 2017;7(2):23-32. Russian.

Srinivasan V, Ohta Y, Espino J, Pariente JA, Rodriguez AB, Mohamed M, Zakaria R. Metabolic syndrome, its pathophysiology and the role of melatonin. Recent Pat EndocrMetab Immune Drug Discov. 2013;7(1):11-25.

El-Aziza R, Naguiba M, Rashedb L. Spleen size in patients with metabolic syndrome and its relation to metabolic and inflammatory parameters. The Egyptian Journal of Internal Medicine. 2018;30:78-82. doi: 10.4103/ejim.ejim_86_17.

Harapko TV. Electron microscopic changes of lymph nodes during correction of sodium glutamate action by melatonin. Reports of Morphology. 2020;26(1):59-64. doi: 10.31393/morphology-journal-2020-26(1)-09.

Goloborod'ko GN, Derho MA, Sereda TI. [Features of the effect of food additives on the animal organism in the model system of laboratory rats]. Agroindustrial complex of Russia. 2015;74:168-72. Russian.

Krynytska I, Marushchak M, Svan О, The indices of endogenous intoxication in rats with carrageenan solution consumption. Georgian medical news. 2018;279:196-200.

Krynytska I, Marushchak M, Naumova L, Mazur L. The Toxic Impact of Monosodium Glutamate in Rats. J Med J. 2019;53(2):91-101.

Monti V, Carlson JJ, Hunt SC, Adams TD. Relationship of ghrelin and leptin hormones with body mass index and waist circumference in a random sample of adults. J Amer Diet Assoc. 2006;106(6):822-8. doi: 10.1016/j.jada.2006.03.015 43.

Trufakin V, Shurlygina A, Dushkin M, Khrapova M, Michurina S, Mel'nikova E, Panteleeva N, Tenditnik M. Effect of Melatonin on Cellular Composition of the Spleen and Parameters of Lipid Metabolism in Rats with Alimentary Obesity. Bulletin of experimental biology and medicine. 2014;158:42-5. doi: 10.1007/s10517-014-2687-6.

##submission.downloads##

Номер

Розділ

Статті