Лектинова гістохімія та морфометрична характеристика надниркових залоз потомства щурів, що розвивалося за умов дисбалансу тироїдних гормонів материнського організму.

Автор(и)

  • S. A. Lutsyk Львівський національний медичний університет імені Данила Галицького, Ukraine
  • Ch. I. Strus Львівський національний медичний університет імені Данила Галицького, Ukraine
  • A. M. Yashchenko Львівський національний медичний університет імені Данила Галицького, Ukraine

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2018.2.30-39

Ключові слова:

лектинова гістохімія, морфометрія, надниркова залоза щура, морфогенез, гіпо- та гіпертироз материнського організму

Анотація

До життєво важливих органів-мішеней щитоподібної залози належать наднирники. Аналіз доступної літератури показав відсутність публікацій, які б характеризували зміни глікокон’югатів структурних компонентів наднирників потомства, що розвивалося на тлі гіпо- чи гіпертирозу материнського організму, хоча відомо, що гліком клітин відіграє важливу роль у реалізації фундаментальних процесів життєдіяльності. У роботі вивчали гістотопографію рецепторів лектину арахісу (PNA) та морфометричні параметри надниркових залоз потомства щурів, що розвивалося за умов експериментального гіпо- та гіпертирозу материнського організму. Гіпотироїдний стан досягали використанням мерказолілу у добовій дозі 10 мг/кг; гіпертироз індукували L-тироксином у добовій дозі 100 мкг/кг маси тіла тварин. Мерказоліл і L-тироксин додавали у їжу щоденно протягом двох тижнів до початку вагітності, упродовж усього гестаційного періоду та перших 40 днів постнатального розвитку потомства. Контроль ефективності моделювання гіпо- та гіпертироїдного стану здійснювали шляхом визначення гормонів Т3 та Т4 у сироватці крові самок радіологічним методом. Проведене дослідження продемонструвало суттєвий вплив дисбалансу тироїдних гормонів материнського організму на морфогенез, мікроморфологію та метаболічні характеристики надниркових залоз потомства, причому гіпертироз індукував більш виражені зміни у порівнянні з гіпотирозом. Як гіпо-, так і гіпертироз супроводжувалися істотним зменшенням розміру адренокортикоцитів у поєднанні зі збільшенням ядерно-цитоплазматичного співвідношення, вираженою перебудовою окремих зон кіркової речовини наднирників.

Посилання

Pankiv VI. [Practical thyroidology]. Do-netsk: Zaslavskyi; 2011. 224 p. Ukrainian.

Boelaert K, Franklyn JA. Thyroid hormones in health and disease. J Endocrinol;2005;187:1-15.

Prystupiuk OM. [Hypothyroidism: altera-tions of organs and systems]. Mezhdunarodnyi Endocrinologicheskiy Zhurnal. 2011;4(36):104-9. Ukrainian.

Pasechko NV, Naumova LV, Heriak CM. [Thyroid pathology and pregnancy]. Visnyk Naukovych Doslidzhen. 2009;4(57):54-6. Ukrainian.

Pashkovska NV. [Hypothyroidism and pregnancy]. Bukovynskiy Medychnyi Visnyk. 2014;18(1):168-72. Ukrainian.

Perminova ST, Fadeyev VV, Korneyeva IV. [Reproductive function of women with thyroid pathology]. Problemy Reprodukcii. 2006;12(1):70-7. Russian.

Johnson EO, Kamilaris TC, Calogero AE, Gold PW, Chrousos GP. Experimentally-induced hyperthyroidism is associated with activation of the rat hypothalamic-pituitary-adrenal axis. Eur J Endocrinol. 2005;153(1):177-85.

Yashchenko A, Lutsyk S. The influence of hypo- and hyperthyroidism on morphogenesis and histophysiology of adrenal glands. J Embryol Stem Cell Res. 2018;2(1):000107.

Detiuk ES, Avgustinovich MS. [Оn the morpho-functional peculiarities of progeny adrenal glands obtained from female rats with experimental hypothyroidism]. Archiv anatomii, gistologii i embriologii. 1976;71(10):41-5. Russian.

Karaca T, Hulya UZY, Karabacak R, Karaboga I, Demirtas S, Cagatay Cicek A. Effects of hyperthyroidism on expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) and apoptosis in fetal adrenal glands. Eur J Histochem. 2015;59(4):258-62.

Wondisford FE. A direct role for thyroid hormone in development of the adrenal cortex. En-docrinology 2015;156(6):1939-40.

Bilyy R, Stoika R. [Sweet taste of cell death: role of carbohydrate recognition systems. In: Biochemistry and biotechnology for modern medi-cine]. Ed. S. Komisarenko. Kyiv: Moskalenko Pub-lishing House; 2013: 615-36. Ukrainian.

Brooks SA, Dwek MV, Schumacher U. Functional and molecular glycobiology. Oxford: Bios Scientific Publishers; 2002. 268 p.

Gabius HJ. The sugar code: why glycans are so important. Biosystems. 2018;164:102-11.

Ohtsubo K, Marth JD. Glycosylation in cel-lular mechanisms of health and disease. Cell. 2006;126:855-67.

Varki A, Cummings RD, Esko JD, Freeze HH, Stanley P, Bertozzi CR, Hart GW, Etzler ME. Essentials of glycobiology. 2nd ed. Cold Spring Harbor: Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2009: 29-178.

Lutsyk AD, Detiuk ES, Lutsyk MD. [Lectins in histochemistry]. Lviv: Vyshcha shkola; 1989. 144 p. Russian.

Antoniuk VO. [Lectins and their sources]. Lviv: Kvart; 2005. 554 p. Ukrainian.

Hirabayashi J, ed. Lectins. Methods and protocols. Methods in molecular biology 1200. New-York: Springer; 2014. 614 p.

Pellicciari C, Biggiogera M, eds. Histochemistry of single molecules. Methods and protocols. Methods in molecular biology, vol.1560. Part II. Lectin histochemistry. NY: Springer; 2017: 93-147.

Sharon N, Lis H. Lectins. 2nd ed. Dor-drecht: Springer; 2007. 464 p.

Dan X, Liu W, Ng TB. Development and applications of lectins as biological tools in biomed-ical research. Medicinal Research Reviews. 2015;36:221-47.

Roth J. Lectins for histochemical demon-stration of glycans. Histochem Cell Biol. 2011;136(2):117-30.

Smolkova O, Zavadka A, Bankston P, Lutsyk A. Cellular heterogeneity of rat vascular en-dothelium as detected by HPA and GS-I ectin-gold probes. Med Sci Monit. 2001;7(4):659-68.

Humetski RYa, Palianytsia BM, Chaban ME. [Mathematical methods in biology: theoretical information, programmed practical work, computer tests]. Lviv: Vyshcha shkola; 2004. 111 p. Ukraini-an.

Parker GA, Picut CA, eds. Atlas of histology of the juvenile rat. Amsterdam: Elsevier-Academic Press; 2016:261-91.

Ahi M, Zamansoltani F, Taheri MMH, Bideskan ARE. The role of GalNAc terminal sugar on adrenal gland development. Adv Biol Res. 2007;1(1-2):34-9.

Haines DM. Peanut agglutinin immunohistochemical staining of normal and neo-plastic canine tissues. Vet Pathol. 1993;30:333-42.

Katz DM, White ME, Hall AK. Lectin binding distinguishes between neuroendocrine and neuronal derivatives of the sympathoadrenal neural crest. Journal of Neurobiology. 1995;26(2):241-252.

Lutsyk AD, Yashchenko AM, Detiuk ES. [Influence of thyroid hormones on the histotopography of lectin receptors in rat salivary glands]. Biulleten Eksperimentalnoi Biologii i Meditsyny. 1987;103(4):492-5. Russian.

Skotarenko TA, Shepitko VI. [Reaction of adrenal cortex to acute aseptic peritonitis and its correction with cryoconserved placenta injection]. Svit Medytsyny ta Biologii. 2016;1:156-9. Ukraini-an.

Grabovskyi SS. [Morphometric characteris-tics of rat adrenals and kidneys at pre-slaughter stress after application of biological active substanc-es]. Studia Biologica. 2014;8(2):43-56. Ukrainian.

Strizhikova SV, Strizhikov VK, Basalayeva NL. [Influence of jodine-indused blackage of thyroid gland on the morphological parameters of female rat adrenals]. Izvestiya Orenburgskogo Gosudarstvennogo Agrarnogo Universiteta. 2014;6(50):91-3. Russian.

Buzueva II, Filyushina EE, Shmerling MD, Markel AL, Jacobson GS. [The chronic stress influ-ence on the adrenal glands structure in hypertensive rats after preventive treatment with terazosin]. Biulleten SO RAMN. 2010;30(4):56-61. Russian.

##submission.downloads##

Номер

Розділ

Статті