Особливості клітинного складу та мікроархітектури гемальних вузлів людини.

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26641/1997-9665.2017.2.28-34

Ключові слова:

лімфатичні вузли, гемальні вузли, лімфоцити, дендритні клітини, макрофаги, інтранодальні судини.

Анотація

Клітинний склад лімфатичних вузлів добре описаний, в той час як в гемальних вузлах він все ще погано вивчений. Мета дослідження - визначити особливості  розподілу основних типів імунокомпетентних клітин і стромальних елементів в гемальних вузлах людини. Як матеріал були використані гемальні вузли, які були взяті під час розтину пацієнтів, померлих внаслідок серцево-судинної або респіраторної патології. Стандартні гістологічні та імуногістохімічні методи були використані. Розподіл лімфоцитів досліджували за допомогою антитіл проти CD20, CD3 і CD8. Для аналізу дендритних клітин і макрофагів використовували антитіла до S100 і CD68. Стромальні елементи були виявлені за допомогою антитіл до SMA і CD34. Висновки: гемальні вузли мають той же характер клітинного розподілу, що і лімфатичні вузли, за винятком В-клітин, які однаково присутні в паракортексі і мозкових тяжах. Серед добре розвиненої інтранодальної судинної системи були виявлені судини, вислані CD34-негативними клітинами.

Посилання

Willard-Mack CL. Normal structure, func-tion, and histology of lymph nodes. Toxicol Pathol. 2006;34(5):409-24.

Bajénoff M, Egen JG, Koo LY, Laugier JP, Brau F, Glaichenhaus N, Germain RN. Stromal cell networks regulate lymphocyte entry, migration, and territoriality in lymph nodes. Immunity. 2006;25(6):989-1001. doi: 10.1016/j.immuni.2006.10.011

Thorp BH, Seneque S, Staute K, Kimpton WG. Characterization and distribution of lympho-cyte subsets in sheep hemal nodes. Dev Comp Immunol. 1991;15(4):393-400.

Casteleyn CR, Breugelmans S, Simoens P, Van den Broeck W. Morphological and immunolog-ical characteristics of the bovine temporal lymph node and hemal node. Vet Immunol Immunopathol. 2008;126(3-4):339-50. doi: 10.1016/j.vetimm.2008.09.010.

Zhang W, Nasu T, Hosaka YZ, Yasuda M. Comparative studies on the distribution and popula-tion of immunocompetent cells in bovine hemal node, lymph node and spleen. J Vet Med Sci. 2012;74(4):405-11.

Fiedler U, Christian S, Koidl S, Kerjaschki D, Emmett MS, Bates DO, Christofori G, Augustin HG. The sialomucin CD34 is a marker of lymphatic endothelial cells in human tumors. Am J Pathol. 2006;168(3):1045-53. doi: 10.2353/ajpath.2006.050554

Kaldjian EP, Gretz JE, Anderson AO, Shi Y, Shaw S. Spatial and molecular organization of lymph node T cell cortex: a labyrinthine cavity bounded by an epithelium-like monolayer of fibro-blastic reticular cells anchored to basement mem-brane-like extracellular matrix. Int Immunol. 2001;13(10):1243-53.

Ji RC. Lymph node lymphangiogenesis, a new concept for modulating tumor metastasis and inflammatory process. Histol Histopathol. 2009;24(3):377-84. doi: 10.14670/HH-24.377.

Cursiefen C, Chen L, Borges LP, Jackson D, Cao J, Radziejewski C, D'Amore PA, Dana MR, Wiegand SJ, Streilein JW. VEGF-A stimulates lymphangiogenesis and hemangiogenesis in inflam-matory neovascularization via macrophage recruit-ment. J Clin Invest. 2004;113(7):1040-50. doi: 10.1172/ JCI20465

Kerjaschki D. The crucial role of macro-phages in lymphangiogenesis. J Clin Invest. 2005;115(9):2316-9.

Tokumoto M, Tanaka H, Ohira M, Go Y, Okita Y, Sakurai K, Toyokawa T, Kubo N, Muguruma K, Maeda K, Sawada T, Hirakawa K. A positive correlation between neutrophils in regional lymph nodes and progression of gastric cancer. An-ticancer Res. 2014;34(12):7129-36.

Chai Q, Onder L, Scandella E, Gil-Cruz C, Perez-Shibayama C, Cupovic J, Danuser R, Sparwasser T, Luther SA, Thiel V, Rülicke T, Stein JV, Hehlgans T, Ludewig B. Maturation of lymph node fibroblastic reticular cells from myofibroblastic precursors is critical for antiviral immunity. Immuni-ty. 2013;38(5):1013-24. doi: 10.1016/j.immuni.2013.03.012.

Link A, Vogt TK, Favre S, Britschgi MR, Acha-Orbea H, Hinz B, Cyster JG, Luther SA. Fi-broblastic reticular cells in lymph nodes regulate the homeostasis of naive T cells. Nat Immunol. 2007;8(11):1255-65.

Malhotra D, Fletcher AL, Astarita J, Lukacs-Kornek V, Tayalia P, Gonzalez SF, Elpek KG, Chang SK, Knoblich K, Hemler ME, Brenner MB, Carroll MC, Mooney DJ, Turley SJ; Immuno-logical Genome Project Consortium. Transcriptional profiling of stroma from inflamed and resting lymph nodes defines immunological hallmarks. Nat Immunol. 2012;13(5):499-510. doi: 10.1038/ni.2262.

Fletcher AL, Lukacs-Kornek V, Reynoso ED, Pinner SE, Bellemare-Pelletier A, Curry MS, Collier AR, Boyd RL, Turley SJ. Lymph node fibro-blastic reticular cells directly present peripheral tissue antigen under steady-state and inflammatory conditions. J Exp Med. 2010;207(4):689-97. doi: 10.1084/jem.20092642.

Lee JW, Epardaud M, Sun J, Becker JE, Cheng AC, Yonekura AR, Heath JK, Turley SJ. Pe-ripheral antigen display by lymph node stroma pro-motes T cell tolerance to intestinal self. Nat Immunol. 2007;8(2):181-90.

Takahashi K, Yamaguchi H, Ishizeki J, Nakajima T, Nakazato Y. Immunohistochemical and immunoelectron microscopic localization of S-100 protein in the interdigitating reticulum cells of the human lymph node. Virchows Arch B Cell Pathol Incl Mol Pathol. 1981;37(2):125-35.

Moore BW. A soluble protein characteristic of the nervous system. Biochem Biophys Res Commun. 1965;19(6):739-44.

Dabbs DJ, editor. Diagnostic immunohisto-chemistry: theranostic and genomic applications. 3rd ed. Saunders Elsevier; 2010. 960 p.

Huang J, Zhu C, Zhang P, Zhu Q, Liu Y, Zhu Z, Wang M, Li W, Yang G, Dong N, Liu J, Chen L, Zhang Y, Yang R, Deng L, Fan J, Wang X, Liu J, Ma B, Fu Q, Wu K. S100+ cells: a new neuro-immune cross-talkers in lymph organs. Sci Rep. 2013;3:1114. doi: 10.1038/srep01114.

Wülfing C, Günther HS. Dendritic cells and macrophages neurally hard-wired in the lymph node. Sci Rep. 2015;5:16866. doi:10.1038/srep16866

Takahashi K, Asagoe K, Zaishun J, Yanai H, Yoshino T, Hayashi K, Akagi T. Heterogeneity of dendritic cells in human superficial lymph node: in vitro maturation of immature dendritic cells into mature or activated interdigitating reticulum cells. Am J Pathol. 1998;153(3):745-55. doi: 10.1016/ S0002-9440(10)65618-0

Holness CL, Simmons DL. Molecular clon-ing of CD68, a human macrophage marker related to lysosomal glycoproteins. Blood. 1993;81(6):1607-13.

Ezeasor DN, Singh A, Sims DE. Erythrophagocytosis in the caprine hemal node. Acta Anat (Basel). 1989;134(4):341-5.

Sasaki K. Erythrophagocytosis of the lymph node macrophages caused by autotransplantation of the splenic tissue into the lymph nodes of rat. Anat Anz. 1990;171(5):335-42.

Cerutti P, Guerrero F. Erythropoiesis and erythrophagocytosis in bovine haemal nodes. Inter-national Journal of Morphology. 2008;26(3):557.

Pototska OYu, Lapsar HS. [Peculiarities of human pancreatolienal hemolymph node structure and cellular composition]. Morphologia. 2016;10(1):77-86. Russian.

##submission.downloads##

Номер

Розділ

Статті